ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Клинико-эпидемио­логический анализ заболеваемости гистоплазмозом в мире

Липницкий А.В., Маркин А.М., Шаров Т.Н., Викторов Д.В., Топорков А.В.

ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт» Роспотребнадзора, Волгоград, Россия
В обзоре представлен анализ клинико-эпидемиологических данных последних лет о заболеваемости и распространении в мире особо опасного (эндемического) микоза – гистоплазмоза. Описаны различные клинические симптомы микоза у иммунокомпетентных и иммуносупрессивных пациентов. Рассматриваются трудности клинической диагностики гистоплазмоза вне эндемических регионов и необходимость использования новых молекулярных методов лабораторной диагностики.

Ключевые слова

гистоплазмоз
эндемические регионы
заболеваемость
клинические симптомы

Возбудители особо опасных (эндемических) микозов (гистоплазмоза, кокцидиоидомикоза, бластомикоза, паракокцидиоидомикоза) являются первичными патогенами, способными вызывать заболевания у иммуноослабленных лиц. Заболеваемость этими микозами в мире существенно возросла в последнее десятилетие. Появилось немало публикаций о заболеваемости людей наиболее распространенным из особо опасных микозов – гистоплазмозом (Гп). Заболевание зафиксировано в Северной Америке, многих странах Центральной и Южной Америки, Азии, Африке, Австралии и Европе. Хотя нет данных о выделении культур возбудителя – Histoplasma capsulatum var. capsulatum – на территории России, однако исключить возможность заболеваний людей этим микозом в нашей стране нельзя. При эпидемиологическом изучении гистоплазмоза в США с 1938 по 2013 г. установлено 105 вспышек болезни в 26 штатах и на территории Пуэрто-Рико. При исследовании вспышек в 77% возбудитель находили в экскрементах птиц и летучих мышей [1]. С 2001 по 2012 г. более чем у 50 000 людей в стране был диагностирован Гп. Количество госпитализированных в последние годы возросло, особенно среди пациентов, относящихся к группам риска (лица после трансплантации органов, пациенты с сахарный диабетом и аутоиммунными заболеваниями) [2]. В США Гп в основном регистрируют в долинах рек Огайо и Миссисипи, однако по мере распространения СПИДа сообщения о больных диссеминированным Гп стали поступать не только из зон с известной эндемичностью, но и из других регионов [3]. По мнению авторов, наши знания об эндемичности Гп неполны и при проявлении иммуносупрессии развитие его возможно, независимо от места проживания больного.

Зоны эндемичности Гп в мире расширяются. Спорадические аутохтонные случаи микоза зарегистрированы в последние годы на Филиппинах [4], в Малайзии [5], Непале [6], на Ямайке [7].

До недавнего времени Индия считалась неэндемичной по Гп территорией [8]. В настоящее время микоз обнаружен в большинстве штатов, хотя заболеваемость чаще регистрируют на востоке страны по течению реки Ганг [9]. Недавно описан случай первичного кожного Гп у иммунокомпетентного 32-летнего мужчины [10]. Тяжелый прогрессирующий диссеминированный микоз с летальным исходом зафиксирован у 13-летней девочки с ювенильной системной красной волчанкой [11]. N. Ganesan и соавт. [12] описали случай диссеминированного Гп, зарегистрированный в южной части Индии у иммунокомпетентного мужчины без наличия известных факторов риска. Клинические симптомы болезни не были характерны для микоза, и диагноз был установлен случайно при исследовании аспирата костного мозга.

Недостаточно изучен Гп в Китае. B. Pan и соавт. [13] проанализировали свыше 300 случаев заболевания, описанных в Китае с 1990 г. по 2011 г. Среди них 75% отмечено в регионах по течению реки Янцзы. Большинство заболевших – местные жители. У 257 больных имелась диссеминированная форма Гп, у 43 – легочная. Сопутствующими заболеваниями были ВИЧ-инфекция, сахарный диабет и болезни почек. Наиболее часто болезнь проявлялась симптомами лихорадки, сплено- и гепатомегалией. L. Zhou et al. [14] рестроспективно изучили клинические данные 8 пациентов с подтвержденным Гп за период 2004–2014 гг. Ни в одном случае при первичном диагнозе микоз не был выявлен, поскольку клинические симптомы были неспецифичны. Еще 4 случая кишечной формы Гп описаны у иммунокомпетентных больных, поступивших в клинику Сычуаньского Университета (г. Чэнду, Китай) с 2005 по 2015 г. [15].

Сведения об эндемичности Гп на Корейском полуострове отсутствуют. Однако недавно исследователи из Сеула (Южная Корея) E. Jung и соавт. [16] обнаружили заболевание у 65-летней женщины, никогда не покидавшей страну. При госпитализации у нее выявили множественные узлы и каверны в легких. По данным биопсии и клинической характеристике был диагностирован хронический кавернозный легочный Гп. Больная полностью выздоровела после лечения антимикотиком – итроконазолом. Это первое сообщение об аутохтонном случае Гп в Южной Корее.

Мало сведений о наличии Гп в Таиланде. Случаи болезни носят спорадический характер, их в основном регистрируют у ВИЧ-инфицированных. При ретроспективном исследовании, проведенном в Бангкоке за период с 2002 по 2012 г. среди 57 больных с предполагаемым Гп, у 21 (37%) выделены культуры гриба. При этом 64,9% больных Гп составили мужчины, средний возраст – 37 лет. У 85% больных выявлена ВИЧ-инфекция [17].

Изучение 171 случая диссеминированного Гп у пациентов с ВИЧ/СПИДом было проведено в Аргентине в 2009–2014 г. Отмечено повышение числа больных за последние 3 года. Диссеминированная форма Гп превалировала у мужчин (средний возраст – 37,8 лет). В 64,3% случаев отмечены кожные поражения, вторыми по частоте были респираторные симптомы. Летальность составила 19,9% [18].

Хотя Гп эндемичен для Бразилии, однако диссеминированные формы редко встречаются у иммунокомпетентных больных. T. Silva et al. [19] провели ретроспективное (за период 2000–2012 гг.) изучение историй болезней 275 пациентов со СПИДом и лабораторно подтвержденным диссеминированным Гп в одном из госпиталей Бразилии и отметили, что большинство пациентов составили молодые мужчины. Гистоплазмозное поражение языка обнаружено у 32-летней ВИЧ-инфицированной женщины [20]. Несомненно, что H. capsulatum – важный патоген, вызывающий тяжелое диссеминированное заболевание у больных СПИДом в этой стране [21]. Описано 2 случая одновременного проявления 2 особо опасных микозов – Гп и паракокцидиоидомикоза у ВИЧ-негативных пациентов из Бразилии [22]. При исследовании в течение 3 лет (2008–2011 гг.) больных СПИДом, госпитализированных в Колумбии с симптомами, напоминающими диссеминированный Гп, у 45 из 89 (51%) диагностирован Гп, а у 35 из них одновременно выявлен и туберкулез [23]. Во Французской Гвиане диссеминированный Гп также часто является одним из осложнений СПИДа. Так, в 2002–2012 гг. были изучены данные 82 пациентов, и у 43 из них Гп сочетался с ВИЧ-инфекцией. Самыми распространенными формами диссеминации были поражения костного мозга и пищеварительной системы. Несмотря на лечение антимикотиками, 13% больных погибли в течение 1 мес. и еще 25% – в течение года [24].

В одном из медицинских центров США с 1999 по 2012 г. были изучены случаи клинически выраженного активного Гп у больных ВИЧ-инфекцией, а также пациентов, перенесших трансплантацию или использовавших иммунодепрессант – ингибитор фактора некроза опухоли (TNF-α). Всего были проанализированы данные 53 ВИЧ-инфицированных, 23 реципиентов трансплантатов, 11 пациентов, получавших терапию ингибитором TNF-α. В наиболее легкой форме болезнь протекала у пациентов, принимавших ингибитор TNF-α. Авторы полагают, что неудачи при лечении антимикотиками и летальность среди больных с тяжелыми формами Гп не были обусловлены типом иммуносупрессии или выбором препарата (амфотерицин Б, триазолы) [25].

Описан случай гистоплазмоза с поражением средостения у 59-летней женщины через 31 мес. после трансплантации почки от живого донора в условиях применения одного из новых иммунодепрессантов – белатацепта (belatacept) [26].

P. Vergidis и соавт. [27] поставили перед собой задачу определить необходимость длительной антимикотической терапии и изучить безопасность возобновления применения блокаторов TNF-α после успешного лечения Гп. При ретроспективном анализе результатов обследования 98 больных они доказали безопасность применения блокатора TNF-α инфликсимаба (infliximab), если лечение антимикотиками (в основном амфотерицином B) продолжалось в течение года. Тем не менее авторы полагают, что терапевтическое блокирование активности TNF-α является фактором риска развития инвазивных микозов. Так, описан случай вертикальной передачи диссеминированного Гп от матери новорожденному, связанный с таким лечением [28].

Африканская форма Гп, вызываемая H. capsulatum var. duboisii, остается редкой. Она распространена преимущественно в регионах Центральной и Западной Африки. Недавно описан случай диссеминированного Гп с поражением кожи, лимфатических узлов, костей и внутренних органов у 22-летнего ВИЧ-серонегативного иммунокомпетентного жителя Буркина Фасо. Наличие гриба подтверждено при исследовании язв и аспирированного гноя путем прямой микроскопии и культивирования возбудителя. Несмотря на регрессию симптомов после лечения флюконазолом, пациент умер [29]. S. Diadie и соавт. [30] изучили случай африканского Гп с полиморфными кожными поражениями у иммунокомпетентного жителя Сенегала. В образцах кожи и биоптате лимфатических узлов выявлены дрожжевые клетки гриба, и получена культура на среде Сабуро. Лечение амфотерицином B было нерегулярным, и пациент погиб от сепсиса. Описан диссеминированнй африканский Гп у 6-летнего мальчика из Бамако (Республика Мали) [31] и у 12-летнего мальчика из Гвинея-Биссау [32]. Впервые обнаружен индигенный случай африканского Гп в Индии. Диссеминированная гнойно-кожная форма выявлена у 59-летнего ранее здорового фермера из региона Керала на юге страны. После длительного (в течение 4 мес.) лечения кетаконазолом пациент полностью выздоровел [33].

Гп редко обнаруживают у жителей Европы и других регионов, традиционно определяемых как неэндемические. Это может быть связано с отсутствием у врачей настороженности или знаний об этом микозе, а также недостатком надежных средств лабораторной диагностики. По мнению K. Benedict и соавт. [34], термин «неэндемический регион» следует использовать с осторожностью и более точно трактовать его как «неизвестный по эндемичности». Недавно описан случай диссеминированного Гп с поражением ротовой полости у ВИЧ-негативного пациента из Швеции [35]. Представлен анализ 4 случаев Гп с широким набором клинических проявлений у жителей Фрайбурга (Германия), посетивших эндемичные по микозу районы в 2004–2013 гг. D. Denning и соавт. [36] описали 3 случая легочного Гп у немецких биологов после посещения в Тринидаде пещеры с летучими мышами. Эндемичность Гп на островах Тринидад и Тобаго подтверждена наличием у 49% местных жителей в возрасте свыше 60 лет положительных аллергических кожных проб на Гп. При проведении ретроспективного анализа случаев заболевания у туристов из Израиля отмечено, что у 22 заболевших симптомы зарегистрированы после посещения стран Центральной и Южной Америки и у 1 – Северной Америки [37]. Еще 14 случаев были обусловлены инфицированием в пещерах, населенных летучими мышами. Симптомы заболевания, как правило, возникали в течение 3 мес. после возвращения из эндемичного региона. С помощью серологических исследований диагноз был подтвержден в 75% случаев заболеваний, имеющих выраженные клинические симптомы, и только в 22% – при их отсутствии. Авторы считают необходимым проведение исследований на Гп всех пациентов с респираторными симптомами и лихорадкой даже спустя год после посещения американского континента.

Описана необычная вспышка легочного Гп после кратковременного посещения группой студентов-биологов тропического леса в Уганде. У 13 из 24 туристов появились респираторные симптомы после возвращения из экспедиции. При рентгенологическом исследовании грудной полости выявлены симптомы, напоминающие милиарный туберкулез, но в большинстве случаев был установлен диагноз Гп. По-видимому, источник инфицирования был связан с расположенным внутри леса огромным дуплистым деревом, населенным летучими мышами [38].

Легочный Гп установлен у 33-летнего жителя Японии после годичного пребывания в Мексике [39].

Анализируя многочисленные публикации последних лет, описывающие клинические симптомы Гп, следует подчеркнуть, что его часто ошибочно диагностируют как бактериальные пневмонии; туберкулезные поражения легких; гранулематозные воспалительные заболевания, такие как саркоидоз или болезнь Крона; злокачественные опухоли [40–44]. У ряда пациентов начальными проявлениями заболевания являются поражения кожи, и диагностические ошибки возможны, если при гистологическом исследовании не используются специальные методы окраски для выявления грибов [45]. Хотя поражения центральной нервной системы при гистоплазмозе происходят редко, но они часто приводят к смерти пациента. Трудности их дифференциальной диагностики обусловлены классическими проявлениями менингита бактериальной этиологии [46–48].

Поскольку у большинства иммунокомпетентных лиц после инфицирования грибом симптомы заболевания не проявляются, лечение необходимо всем иммунокомпрометированным пациентам и лицам с диссеминированной или хронической легочной формой болезни. Предпочтительными средствами терапии при более тяжелых случаях являются липидные или липосомальные комплексы амфотерицина B, при легких – интраконазол или другие представители азолов [49, 50].

Лабораторная диагностика Гп осложнена низкой чувствительностью и длительностью (от недели и более) получения культуры возбудителя. Хотя этот метод остается «золотым» стандартом, культивирование мицелиальной фазы гриба может быть проведено лишь в лабораториях, обеспечивающих высокий уровень безопасности персонала при работе с возбудителями особо опасных микозов. По данным D. Falci и соавт. [51], обобщивших публикации 1956–2016 гг. по применению некультуральных методов лабораторной диагностики диссеминированного Гп при вспышках заболевания, при которых пострадали не менее 10 человек, метод выявления гистоплазменного антигена в моче является более точным по сравнению с другими методами. В последние годы для диагностики заболевания успешно используют молекулярно-генетические методы, которые значительно сокращают время постановки диагноза, обладают высокой чувствительностью и специфичностью, уменьшают риск инфицирования персонала. Среди них наиболее распространены различные варианты ПЦР [52–54]. Молекулярные методы являются также важными инструментами эпидемиологических исследований по выявлению гриба во внешней среде, идентификации источников инфекции, определению различных генотипов H. capsulatum. Они позволяют сгруппировать штаммы гриба в соответствии с территориями их распространения, а также клиническим проявлением заболевания.

Таким образом, данные литературы свидетельствуют о разнообразии клинических симптомов Гп и преимуществах молекулярных методов диагностики заболевания.

Список литературы

  1. Benedict K., Mody R. Epidemiology of Histoplasmosis Outbreaks, United States, 1938–2013. Emerg. Infect. Dis. 2016; (3): 37–8. DOI: 10.3201/eid2203.151117
  2. Benedict K., Derado G. Histoplasmosis-Associated Hospitalizations in the United States, 2001–2012. Open Forum Infect. Dis. 2016; 3(1). http://dx.doi. org/10.1093/ofid/ofv219
  3. Bahr N., Antinori S., Wheat L., Sarosi G. Histoplasmosis infections worldwide: thinking outside of the Ohio River valley. Curr. Trop. Med. Rep. 2015; 2(2): 70–80.
  4. Azar M., Malinis M. Disseminated Histoplasmosis with Skin Lesions and Osteomyelitis in a Patient from the Philippines. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2016; 95(1): 70–4. DOI: 10.4269/ajtmh.16-0063
  5. Hu A., Hu C. Histoplasmosis with Addisonian Crisis: Call for Bird Control. Med. J. Malaysia 2015; 70(2): 104–5.
  6. Thapa S., Jha S., Trotter A. Persistent Fever and Skin Lesions Due to Histoplasmosis in a Boy from Rural Nepal. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2016; 94(2): 249–50. DOI: 10.4269/ajtmh.15-0664.
  7. Gugnani H., Denning D. Estimated Burden of Serious Fungal Infections in Jamaica by Literature Review and Modelling. West Indian Med. J. 2015; 64(3): 245–9. DOI: 10.7727/wimj.2014.204
  8. Gajendra S., Sharma R., Goel S., Goel R., Lipi L., Sarin H. Adrenal Histoplasmosis in Immunocompetent Patients Presenting as Adrenal Insufficiency. Turk Patoloji Derg. 2016; 32(2): 105–11. DOI: 10.5146/tjpath.2015.01349
  9. Panda P., Jain S., Sood R., Yadav R., Vikram N. Typical Facial Lesions: A Window of Suspicion for Progressive Disseminated Histoplasmosis-A Case of Asian Prototype. Case Rep. Infect. Dis. 2016; 28(6): 41–52.
  10. Raina R., Mahajan V., Sood A., Saurabh S. Primary Cutaneous Histoplasmosis in an Immunocompetent Host from a Nonendemic Area. Indian J. Dermatol. 2016; 61(4): 467. DOI: 10.4103/0019-5154.185748.
  11. Sarkar P., Basu K., Mallick Sinha M. A Rare Case of Juvenile Systemic Lupus Erythematosus with Disseminated Histoplasmosis. Indian J. Dermatol. 2016; 61(6): 700.
  12. Ganesan N., Sharma R., Phansalkar M., Varghese R. Disseminated Histoplasmosis in an Immunocompetent Patient Diagnosed on Bone Marrow Aspirate – A Rare Presentation from a Non-Endemic Area. J. Clin. Diagn. Res. 2015; 9(12): 7–8. DOI: 10.7860/JCDR/2015/14655.6894
  13. Pan B., Chen M., Pan W., Liao W. Histoplasmosis: a new endemic fungal infection in China? Review and analysis of cases. Mycoses 2013; 56(3): 212–21. DOI: 10.1111/myc.12029.
  14. Zhou L., Fan S., Liang Q., Peng Y., Zong D., Ouyang R. Clinical characteristics of histoplamosis in 8 patients: case report and literature review. World J. Gastroenterol. 2016; 41(6): 644–52. DOI: 10.11817/j.issn.1672-7347.2016.06.015
  15. Zhu L., Wang J., Wang Z., Wang Y., Yang J. Intestinal histoplasmosis in immunocompetent adults. World J Gastroenterol. 2016; 22(15): 4027–33. DOI: 10.3748/wjg.v22.i15.4027
  16. Jung E., Park D., Choi J., Choi W. Chronic cavitary pulmonary histoplasmosis in a non-HIV and immunocompromised patient without overseas travel history. Yonsei Med. J. 2015; 56(3): 871–4. DOI: 10.3349/ymj. 2015.56.3.871
  17. Wongprommek P., Chayakulkeeree M. Clinical Characteristics of Histoplasmosis in Siriraj Hospital. J. Med. Assoc. Thai. 2016; 99(3): 257–61.
  18. López Daneri A., Arechavala A., Iovannitti C., Mujica M. Disseminated histoplasmosis in patients with AIDS. Buenos Aires, 2009–2014. Medicina (B Aires) 2016; 76(6): 332–7.
  19. Silva T., Treméa C., Zara A., Mendonça A., Godoy C., Costa C. Prevalence and lethality among patients with histoplasmosis and AIDS in the Midwest Region of Brazil. Mycoses 2017; 60(1): 59–65. DOI: 10.1111/myc.12551.
  20. Klein I., Martins M., Martins M., Carrard V. Diagnosis of HIV infection on the basis of histoplasmosis-related oral ulceration. Spec. Care Dentist. 2016; 36(2): 99–103. DOI: 10.1111/scd.12147
  21. Hoffmann E., Daboit T., Paskulin D., Monteiro A., Falci D., Linhares. Disseminated histoplasmosis and AIDS: a prospective and multicentre study to evaluate the performance of different diagnostic tests. Mycoses 2017; 60(1): 20–24. DOI: 10.1111/myc.12536
  22. Pereira G., Lanzoni V., Beirão E., Timerman A. Disseminated fungal infection with adrenal involvement: report of two hiv negative brazilian patients. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo 2015; 57(6): 527–30. DOI: 10.1590/S0036-46652015000600013
  23. Caceres D., Tobón A., Cleveland A., Scheel C., Berbesi D., Ochoa J. Clinical and Laboratory Profile of Persons Living with Human Immunodeficiency Virus/Acquired Immune Deficiency Syndrome and Histoplasmosis from a Colombian Hospital. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2016; 95(4): 918–24.
  24. Putot A., Perrin S., Jolivet A., Vantilcke V. HIV-associated disseminated histoplasmosis in western French Guiana, 2002–2012. Mycoses 2015; 58(3): 160–6.
  25. Luckett K., Dummer J., Miller G., Hester S., Thomas L. Histoplasmosis in Patients With Cell-Mediated Immunodeficiency: Human Immunodeficiency Virus Infection, Organ Transplantation, and Tumor Necrosis Factor-α Inhibition. Open. Forum Infect. Dis. 2015; 2(1): ofu116. DOI: 10.1093/ofid/ ofu116
  26. Trimarchi H., Rengel T., Andrews J., Paulero M., Iotti A., Forastiero A. Belatacept and mediastinal histoplasmosis in a kidney transplant patient. J Nephropathol. 2016; 5(2): 84–7. DOI: 10.15171/jnp.2016.15
  27. Vergidis P., Avery R., Wheat L., Dotson J., Assi M., Antoun S. Histoplasmosis complicating tumor necrosis factor-α blocker therapy: a retrospective analysis of 98 cases. Clin. Infect. Dis. 2015; 61(3): 409–17. doi: 10.1093/cid/civ299
  28. Carlucci J., Halasa N., Creech C., Dulek D., Gómez-Duarte O., Nelson G. Vertical Transmission of Histoplasmosis Associated With Anti-Tumor Necrosis Factor Therapy. J. Pediatric. Infect. Dis. Soc. 2016; 5(2): e9–e12. DOI: 10.1093/jpids/piw001
  29. Zida A., Niamba P., Barro-Traoré F. Disseminated histoplasmosis caused by Histoplasma capsulatum var. duboisii in a non-HIV patient in Burkina Faso: Case report. J. Mycol. Med. 2015; (2): 159–62. DOI: 10.1016/j.mycmed. 2015.03.002.
  30. Diadie S., Diatta B., Ndiaye M., Gaye M., Sow D., Ndiaye M. Multifocal histoplasmosis due to Histoplasma capsulatum var. duboisii in a 22 year-old Senegalese patient without proven immunodepression. J. Mycol. Med. 2016; 26(3): 265–70. DOI: 10.1016/j.mycmed.2016.03.004
  31. Minta D., Sylla M., Traoré A., Soukho-Kaya A., Coulibaly I., Diallo K. Malian first observation of disseminated African histoplasmosis with predominant bone localizations in an HIV-negative child in Bamako (Mali). Review of the literature. J. Mycol. Med. 24(2): 152–7. doi: 10.1016/j.mycmed.2013.08.001
  32. Gonçalves D., Ferraz C., Vaz L. Posaconazole as rescue therapy in African histoplasmosis. Braz. J. Infect. Dis. 2013; 17(1): 102–5. DOI: 10.1016/j.bjid. 2012.06.027.
  33. Ravindran S., Sobhanakumari K., Celine M., Palakkal S. African histoplasmosis: the first report of an indigenous case in India. Int. J. Dermatol. 2015; 54(4): 451–5. DOI: 10.1111/ijd.12683
  34. Benedict K., Thompson G., Deresinski S., Chiller T. Mycotic Infections Acquired outside Areas of Known Endemicity, United States. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21(11): 1935–41. DOI: 10.3201/eid2111.141950
  35. Mota de Almeida F., Kivijärvi K., Roos G., Nylander K. A case of disseminated histoplasmosis diagnosed after oral presentation in an old HIV-negative patient in Sweden. Gerodontology 2015; 32(3): 234–6. DOI: 10.1111/ger.12150.
  36. Denning D., Gugnani H. Burden of serious fungal infections in Trinidad and Tobago. Mycoses 2015; 58 (Suppl 5): 80–4. DOI: 10.1111/myc.12394
  37. Segel M., Rozenman J., Lindsley M., Lachish T., Berkman N., Neuberger A. Histoplasmosis in Israeli travelers. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2015; 92(6): 1168–72. DOI: 10.4269/ajtmh.14-0509
  38. Cottle L., Gkrania-Klotsas E., Williams H., Brindle H., Carmichael A., Fry G., Beeching N. A multinational outbreak of histoplasmosis following a biology field trip in the Ugandan rainforest. J. Travel Med. 2013; 20(2): 83–7. DOI: 10.1111/jtm.12012.
  39. Asahata-Tago S., Hirai Y., Ainoda Y., Fujita T., Muraosa Y., Kamei K. Pulmonary Histoplasmosis in a Japanese Man Infected During Travel to Mexico and Management of His Wife’s Condition: A Case Report. Kansenshogaku Zasshi 2016; 90(1): 83–7.
  40. Anupam B., Rupali D. Sarcoidosis and Histoplasmosis: Is One a Consequence of the Other? A Case Report and Review of the Literature Case Reports in Rheumatology. 2015; Article ID 108459, 5 pages. DOI: 10.1155/2015/108459
  41. Gailey M., Keeney M., Jensen C. A cytomorphometric analysis of pulmonary and mediastinal granulomas: differentiating histoplasmosis from sarcoidosis by fine-needle aspiration. Cancer Cytopathol. 2015; 123(1): 51–8. DOI: 10.1002/cncy.21491
  42. George P., Nayak N., Anoop T., Gopi N., Vikram H. Pulmonary histoplasmosis mimicking carcinoma lung. Lung India 2015; 32(6): 663–5. DOI: 10.4103/0970-2113.168133
  43. Hage C., Azar M., Bahr N., Loyd J., Wheat L. Histoplasmosis: Up-to-Date Evidence-Based Approach to Diagnosis and Management. Semin. Respir. Crit. Care Med. 2015; 36(5): 729–45. DOI: 10.1055/s-0035-1562899
  44. Ye C., Zhang G., Wang J., Chai Y. Histoplasmosis presenting with solitary pulmonary nodule: two cases mimicking pulmonary metastases. Niger J. Clin. Pract. 2015; 18(2): 304–6. DOI: 10.4103/1119-3077.151075
  45. Hong J., Stetsenko G., Pottinger P., George E. Cutaneous presentation of disseminated histoplasmosis as a solitary peri-anal ulcer. Case report and discussion. J. Cutan. Pathol. 2016; 43(5): 438–43. doi: 10.1111/cup.12682
  46. Nguyen F., Kar J., Zakaria A., Schiess M. Isolated central nervous system histoplasmosis presenting with ischemic pontine stroke and meningitis in an immune-competent patient. JAMA Neurol. 2013; 70(5): 638–41. DOI: 10.1001/jamaneurol.2013.1043
  47. Hariri O., Minasian T., Quadri S., Dyurgerova A., Farr S. Histoplasmosis with Deep CNS Involvement: Case Presentation with Discussion and Literature Review. J. Neurol. Surg. Rep. 2015; 76(1): e167–72. DOI: 10.1055/s-0035-1554932
  48. Nyalakonda H., Albuerne M., Suazo Hernandez L., Sarria J. Central Nervous System Histoplasmosis in Acquired Immunodeficiency Syndrome. Am. J. Med. Sci. 2016; 351(2): 177–86. DOI: 10.1016/j.amjms.2015.11.016
  49. Hamill R. Amphotericin B formulations: a comparative review of efficacy and toxicity. Drugs 2013; 73(9): 919–34. DOI: 10.1007/s40265-013-0069-4
  50. De D., Nath U. Disseminated Histoplasmosis in Immunocompetent Individuals – not a so Rare Entity, in India. J. Hematol. Infect. Dis. 2015; 7(1): e2015028. DOI: 10.4084/MJHID.2015.028
  51. Falci D., Hoffmann E., Paskulin D., Pasqualotto A. Progressive disseminated histoplasmosis: a systematic review on the performance of non-culture-based diagnostic tests. Braz. J. Infect. Dis. 2017; 21(1): 7–11. DOI: 10.1016/j.bjid.2016.09.012
  52. Buitrago M., Canteros C., Frías De León G., González Á., Marques-Evangelista De Oliveira M. Comparison of PCR protocols for detecting Histoplasma capsulatum DNA through a multicenter study. Rev. Iberoam Micol. 2013; 30(4): 256–60. DOI: 10.1016/j.riam.2013.03.004
  53. Dantas K., Freitas R., Moreira A., Silva M., Benard G., Vasconcellos C. The use of nested Polymerase Chain Reaction (nested PCR) for the early diagnosis of Histoplasma capsulatum infection in serum and whole blood of HIV-positive patients. An. Bras. Dermatol. 2013; 88(1): 141–3.
  54. Muraosa Y., Toyotome T., Yahiro M., Watanabe A., Shikanai-Yasuda M., Kamei K. Detection of Histoplasma capsulatum from clinical specimens by cycling probe-based real-time PCR and nested real-time PCR. Med. Mycol. 2016; 54(4): 433–8. DOI: 10.1093/mmy/myv106

Об авторах / Для корреспонденции

Липницкий Анатолий Васильевич – д.м.н., профессор, главный научный сотрудник лаборатории особо опасных микозов ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт» Роспотребнадзора, Волгоград, Россия; е-mail: lipnitskii@list.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-4416-984X
Маркин Александр Михайлович – к.м.н., старший научный сотрудник лаборатории особо опасных микозов ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора», Волгоград, Россия; е-mail: alexander.markin.34@gmail. com; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-0423-3130
Шаров Тимур Николаевич – к.м.н., старший научный сотрудник сектора протеомного анализа ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора», Волгоград, Россия; е-mail: timursharov@gmail.com; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-7906-1708
Викторов Дмитрий Викторович – д.б.н., доцент, заместитель директора по научно-экспериментальной работе ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора», Волгоград, Россия; е-mail: dvictorov09@gmail.com; ORCID: http://orcid. org/0000-0002-2722-7948
Топорков Андрей Владимирович – д.м.н., доцент, директор ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора», Волгоград, Россия; е-mail: vari2@sprint-v.com.ru; ORCID: http://orcid. org/0000-0002-3449-4657

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.