ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Микоплазменная инфекция после трансплантации жизненно важных органов в раннем послеоперационном периоде

Горина Л.Г., Крупенио T.В., Горская Е.М., Корнило М.Н., Цирульникова И.Е., Гончарова С.А., Гамова Н.А., Раковская И.В., Габри­элян Н.И.

1ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, Москва, Россия: 2ФГБУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. В.И. Шумакова» Минздрава России, Москва, Россия
Цель исследования. Выявление микоплазм у реципиентов солидных органов после трансплантации.
Материалы и методы. Проведено исследование по выявлению микоплазменной инфекции у 99 реципиентов после трансплантации сердца, печени, почек. Пациентов разделили на 2 группы: в 1-ю вошли 86 больных с легким течением послеоперационного периода, во 2-ю – 13 пациентов, у которых послеоперационный период протекал тяжело. Определение антигенов микоплазм проводили с примененим реакции агрегат-гемагглютинации (РАГА), антител – с применением реакции пассивной гемагглютинации (РПГА).
Результаты. Выявлены маркеры разных видов микоплазм у больных после трансплантации органов. Mycoplasma pneumoniaе у пациентов после ортотопической трансплантации сердца (ОТТС) выявляли почти в 2 раза чаще, чем после родственной трансплантации фрагмента печени (ТФРП): 54,5 ± 0,08% против 31,0 ± 0,09% соответственно (р < 0,05). Ureaplasma spp. также преобладала у больных после ОТТС по сравнению с пациентами после ТФРП, но эти данные статистически не достоверны (р> 0,05). Ureaplasma spp. чаще обнаруживали у больных 2-й группы по сравнению с больными 1-й группой: частота выделения составила 46,2 ± 0,14% против 36,0 ± 0,05% (р < 0,05). Показатель частоты выделения M. pneumoniae у пациентов в 1-й группе составил 47,7 ± 0,05%, во 2-й – 30,8 ± 0,13% (p> 0,05).
Заключение. Выявление микоплазм важно не только для профилактики и лечения микоплазменной инфекции в раннем госпитальном периоде, но и для предупреждения поздних осложнений.

Ключевые слова

трансплантация органов
инфекционные осложнения
микоплазменные инфекции

Клиническая трансплантология – интенсивно развивающаяся область медицинской науки и технологий, позволяющая успешно использовать трансплантацию органов как метод лечения различных заболеваний, не поддающихся традиционным методам. Клиническая трансплантология решает задачи не только спасения неизлечимых больных, но и достижения длительного выживания пациентов, их медицинской и социальной реабилитации. Свидетельством успехов трансплантологии является быстрое увеличение числа новых центров, клиник и отделений трансплантации как за рубежом, так и в нашей стране. В Российской Федерации в 2015 г. выполнено 1485 операций по трансплантации органов [1].

В области трансплантологии, как и в других направлениях клинической медицины, имеются серьезные проблемы. Одна из них – инфекционные осложнения, которые могут развиваться после трансплантации органов. Возбудителями инфекции являются бактерии, вирусы, грибы. Часто этому способствуют имеющиеся у пациентов очаги хронической и латентной инфекции, в том числе микоплазменной. Возбудители заболевания – микоплазмы – относятся к бактериям класса Mollicutes и являются самыми мелкими прокариотами. Они не имеют ригидной клеточной стенки, её роль выполняет трёхслойная цитоплазматическая мембрана. С отсутствием клеточной стенки связаны уникальные биологические особенности микоплазм, такие как полиморфизм, множественные способы репродукции, устойчивость к препаратам, воздействующим на клеточную стенку, и другие [2]. Человек является естественным хозяином по крайней мере 16 видов микоплазм, большинство из которых – комменсалы, но 6 видов: Mycoplasma pneumoniaе, Mycoplasma hominis, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma spp. и Mycoplasma fermentans обладают вирулентными свойствами и достаточно часто становятся причиной развития воспалительных патологических процессов в органах мочеполовой и респираторной систем [3–6]. Микоплазмы вызывают заболевания респираторного и урогенитального трактов человека. Основным возбудителем респираторного микоплазмоза является M. pneumoniaе. Микроорганизм поражает верхние дыхательные пути с развитием фарингита, бронхита, атипичной пневмонии. M. pneumoniaе служит этиологическим фактором 10–25% острых респираторных заболеваний и 6–25% пневмоний [7, 8].

Несмотря на актуальность проблемы, в отечественной литературе мы не нашли сведений о выявлении микоплазменных инфекций после трансплантации органов.

Целью настоящей работы является выявление маркеров микоплазм у реципиентов солидных органов.

Материалы и методы

Материалом для лабораторных исследований служили образцы сыворотки крови, полученные при проведении клинико-лабораторных исследований пациентов трансплантологического профиля. Всего обследовано 99 пациентов. 1-ю группу составили 86 больных с легким течением послеоперационного периода, обследованных в различные сроки после трансплантации. Пациенты перенесли разные виды операций: ортотопическую трансплантацию сердца (ОТТС) – 44 человека, ортотопическую трансплантацию печени (ОТТП) – 9 человек, родственную трансплантацию фрагмента печени (ТФРП) – 29 человек, прочие трансплантации – 4 человека. Во 2-ю группу были включены 13 пациентов c тяжелым течением послеоперационного периода. Исследования проведены в отделении реанимации и интенсивной терапии, кардиохирургическом и абдоминально-хирургических отделениях ФГБУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. В.И. Шумакова» Минздрава России (Москва). Специфические микробиологические исследования проводили в лаборатории микоплазм и L-форм бактерий ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России (Москва). Пробы сыворотки крови пациентов исследовали на наличие антигенов следующих видов микоплазм: M. pneumoniaе, M. hominis, U. spp. и антител к ним. Антигены выявляли в реакции агрегат-гемагглютинации (РАГА), антитела – в реакции пассивной гемагглютинации (РПГА). Для выявления уреаплазм использовали антисыворотку к антигенам двух видов уреаплазм. Методы постановки реакций и методы приготовления гипериммунных сывороток крови, используемых при проведении этих реакций, подробно описаны И.В. Раковской [3].

Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием программного пакета STATISTICA 10 («Stat Soft», США). Анализ данных осуществлялся с применением параметрического t-критерия Стьюдента. Для обозначения статистической значимости выбран уровень р < 0,05 (общепринятый для медицинских исследований).

Результаты и обсуждение

В табл. 1 представлены полученные нами данные о частоте выявления антигенов микоплазменных инфекций у пациентов после трансплантации солидных органов.

Результаты свидетельствуют о том, что U. spp. чаще обнаруживали во 2-й группе по сравнению с 1-й, а M. pneumoniae, напротив, чаще находили у пациентов 1-й группы.

Данные о частоте обнаружения микоплазм у пациентов после трансплантации сердца и фрагмента печени от родственного донора представлены в табл. 2.

Как видно из табл. 2, антигены M. pneumoniaе у пациентов после ОТТС выявляли в 1,8 раза чаще, чем после ТФРП. Уреаплазмы также преобладали у больных после ОТТС по сравнению с пациентами после ТФРП. Эти данные статистически не достоверны, хотя тенденция прослеживается.

Антитела к разным видам микоплазм без обнаружения антигена найдены у 5 взрослых больных после ОТТС. Связаны ли они с инфекцией или носительством, определить в нашем предварительном исследовании не было возможности. Таким образом, у обследованных нами 99 пациентов после трансплантации сердца, фрагмента печени, трупной печени, почек частота выявления микоплазм в зависимости от их вида составила от 37,4 до 45,5%.

Обсуждение

Выявлению микоплазменных инфекций после трансплантации органов посвящены немногочисленные работы зарубежных авторов. Согласно результатам их исследований, после трансплантации наблюдаются разнообразные по клиническим проявлениям и степени тяжести формы микоплазменной инфекции. Клиническая картина инфекции неспецифична и, как правило, не отличается от проявлений инфекций, вызванных другими микроорганизмами.

G. Lui и соавт. [9] при обследовании 279 детей и подростков на фоне атипичной пневмонии микоплазмы были обнаружены в 8% больных; при обследовании 1193 взрослых пациентов с диагнозом «внебольничная пневмония» возбудители бактериальной и вирусной этиологии выявлены у 468 (39,2%). В исследовании F. Daxbock и соавт. [10] возбудители атипичной пневмонии обнаружены в 28,6% случаев, из них микоплазмы составляли 97,8%. U. spp, M. genitalium, M. hominis вызывают воспалительные заболевания урогенитального тракта человека: уретрит, пиелонефрит, вагинит и др. [11]. Источником инфекции является больной или здоровый носитель микробов. Для микоплазменных инфекций характерна длительная персистенция возбудителя в инфицированном организме. M. hominis была выделена из мочи у 2% обследованных лиц старше 50 лет и у 6% лиц моложе 50 лет, не имевших симптомов заболевания и признаков воспаления. M. fermentans выделена из мочи у 20% здоровых студентов-медиков [12].

В настоящее время к категории риска развития микоплазменных инфекций относят реципиентов жизненно важных органов: сердца, легких, печени, почек, что является одной из проблем трансплантологии. При пересадке зараженного микоплазмами донорского органа заболевание у реципиента на фоне иммуносупрессивной терапии развивается стремительно и в большинстве случаев без своевременной этиотропной терапии заканчивается смертью пациента [13]. Микоплазмы могут вызывать абсцессы органов, медиастиниты, перикардиты, пневмонии, сепсис.

Урогенитальные микоплазмы (уреаплазмы) передаются контактно-бытовым путем. M. hominis обнаруживают во влагалище менее чем у 10% здоровых женщин, U. urealyticum – значительно чаще: по некоторым данным, у 50% здоровых женщин. Микоплазменное носительство у клинически здоровых людей представляет потенциальную опасность, так как при некоторых условиях (сопутствующие инфекции, стероидная терапия и др.) микоплазмы могут активизироваться и стать причиной септических процессов.

В табл. 3 представлены данные зарубежных исследователей о клинических проявлениях мико- и уреаплазменной инфекций у реципиентов органов.

Анализ полученных результатов свидетельствует о необходимости рекомендовать разработку схемы лабораторного мониторинга микоплазменной инфекции для оптимизации ее диагностики у реципиентов солидных органов. Ранняя диагностика будет способствовать своевременному назначению соответствующей антибиотикотерапии. Препаратами выбора при этитропной терапии являются тетрациклины, макролиды и фторхинолоны [19, 20]. При микоплазменной пневмонии эффективно применение макролидов и тетрациклинов. Продолжительность этиотропной терапии не зависит от выявления маркеров M. pneumoniaе, так как после проведенного лечения антигены и антитела к ним могут длительно сохраняться в организме больного. Продолжительность терапии должна определяться клиническими, а не лабораторными критериями. В этой связи интересны данные, опуб­ликованные D. Mitsani и соавт. [17] и G.M. Lyon и соавт. [18], согласно которым реципиенты солидных органов, получавшие препараты, эффективные против урогенитальных и респираторных микоплазм (доксициклин, клиндамицин, ципрофлоксацин, азитромицин), имели минимальный риск развития микоплазменной инфекции.

Заключение

Анализ данных литературы и результаты собственных исследований свидетельствуют о важности проблемы микоплазменных инфекций для клинической трансплантологии. Не вызывает сомнения необходимость продолжения детальных клинических наблюдений, в частности, проведение обследования реципиентов и донорского материала на наличие антигенов и антител к микоплазмам перед трансплантацией и в посттрансплантационном периоде. Это важно как для профилактики и лечения острой мико- или уроплазменной инфекции в раннем госпитальном периоде, так и для предупреждения поздних осложнений. Необходимо обратить внимание на то, что микоплазмы могут способствовать непрямому повреждению тканей, вызывая усиление клеточных реакций, а также повышая чувствительность клеток к вирусам, которые интенсивно размножаются в делящихся клетках. Последнее может быть предиктором развития вирусных и бактериальных инфекций, онкологических заболеваний, дисфункии и отторжения трансплантата. Разработка алгоритма клинико-лабораторного обследования доноров и реципиентов в разные сроки после трансплантации даст возможность получить материал для формирования научно обоснованных систем лабораторного мониторинга, лекарственной профилактики и лечения пациентов трансплантологического профиля.

Список литературы

1. Готье С.В., Хомяков С.М. Донорство и трансплантация органов в Российской Федерации в 2015 году. Вестник трансплантологии и искусственных органов 2016; (2):6–27.

2. Razin S., Herrmann R. Molecular biology and pathogenicity of mycoplasmas. New York: Kluwer, 2002; 45–73.

3. Раковская И.В. Микоплазмы и микоплазмозы человека. Руководство для врачей. М., 1999. 35 р.

4. Целипанова Е.Е., Феклисова Л.В., Савицкая Н.А., Галкина Л.А., Казанова С.П. Микоплазмозы и хламидийные инфекции. Учебное пособие. М.: МОНИКИ им.М.Ф. Владимирского, 2009.

5. Микоплазмозы. В кн.: Лобзин Ю.В., Жданов В.П., ред. Руководство по инфекционным болезням. В 2 кн. Кн. 2. СПб: Фолиант, 2011; 553–9.

6. Иванова В.В., ред. Инфекционные болезни у детей. М.: МИА, 2009; 279–84.

7. Борхсениус С.Н., Чернова О.А., Чернов В.М., Вонский М.С. Микоплазмы: молекулярная и клеточная биология, взаимодействие с иммунной системой млекопитающих, патогенность, диагностика. СПб: Наука, 2002. 316 с.

8. Kurz H., Gopfrich H., Huber K., Kruqluger V.V. Spectrum of pathogens of in-patient children and youths with community acquired pneumonia: a 3 year survey of a community hospital in Vienna, Austria. Wien Klin. Wochenschr. 2013; 125(21–22): 674–9.

9. Lui G., Lee N., Rainer T.H., Man S.Y., Cockram C.S., Antonio G.E, Ng M.H., Chan M.H., Chau S.S., Mak P., Chan P.K., Ahuja A.T., Sung J.J., Hui D.S. Role of ≪atypical pathogens≫ among adult hospitalized patients with community – acquired pneumonia. Respirology 2009; 14(8): 1098–105. DOI: 10.1111/j.1440-1843.2009.01637.x.

10. Daxbock F., Brunner G., Popper H., Krause R., Schmid K., Krejs G.J., Wenisch C. A case of lung transplantation following Mycoplasma pneumonia infection. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2002; 21(4): 318–40.

11. Заплатников А.Л., Короид Н.В., Глухарева Н.С. Микоплазменная инфекция в респираторной патологии у детей. Атмосфера. Пульмонология и аллергология 2011;3(42): 1–4.

12. Поздеев О.К. Медицинская микробиология. Учебное пособие. Под ред. В.И. Покровского. 4-е изд., испр. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2010; 426–30.

13. Boyle E.M. Jr., Burdine J., Bolman R.M. Successful treatment of Mycoplasma mediastinitis after heart – lung transplantation. J. Heart. Lung. Transplant. 1993; 12(3): 508–20.

14. Camara B., Mouzin M., Ribes D., Esposito L., Guitard J. et al. Perihepatitis and perinephric abscess due to Mycoplasma hominis in a kidney transplant patients. Exp. Clin. Transplant. 2007; 5(2): 708–17.

15. Cordtz J., Jensen J.S. Disseminated Ureaplasma urealyticum infection in a hypogammaglobulinaemic renal transplant patient. Scand. J. Infect. Dis. 2006; 38(11–12): 1114–21.

16. Hopkins P.M., Winlaw D.S., Chhajed P.N., Harkness J.L., Horton M.D., Keogh A.M., Malouf M.A., Glanville A.R. Mycoplasma hominis infection in heart and lung transplantation. J. Heart. Lung. Transplant. 2002; 21(11): 1225–34.

17. Mitsani D., Nguyen M.H., Silveira F.P., Bermudez C., Toyoda Y., Pasculle A.W., Clancy C.J. Mycoplasma hominis pericarditis in a lung transplant recipient: review of the literature about an uncommon but important cardiothoracic pathogen. Transpl. Infect. Dis. 2010; 12(2): 146–96.

18. Lyon G.M., Alspaugh J.A., Meredith F.T., Harrell L.J., Tapson V., Davis R.D., Kanj S.S. Mycoplasma hominis pneumonia complicating bilateral lung transplantation: case report and review of the literature. Chest 2010; 112 (5); 1428–60.

19. Tomaino J., Keegan T., Miloh T., Kerkar N., Mercer S., Birge M., Rocca J., Suchy F., Arnon R. Stevens–Jhnson syndrome after Mycoplasma pneumonia infection in pediatric post – liver transplant recipient: case report and review of the literature. Pediatr. Transplant. 2012; 16(3); 74–81.

20. Jacobs F., van de Stadt J., Gelin M., Nonhoff C., Gay F., Adler M., Thys J.P. Mycoplasma hominis infection of perihepatic hematomas in a liver transplant recipient. Surgery 1992; 111(1): 98–100.

Об авторах / Для корреспонденции

Для корреспонденции:
Габриэлян Нина Индзаровна – зав. бактериологической лаб., врач-эпидемиолог ФГБУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. В.И. Шумакова» Минздрава России
Адрес: 123182, Москва, ул. Щукинская, д. 1
Е-mail: labgso@mail.ru

Сведения об авторах:
Горина Луиза Георгиевна – д-р биол. наук, вед. науч. сотр. лаб. микоплазм и L-форм бактерий ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России; e-mail: lugor@bk.ru
Крупенио Татьяна Владимировна – лаборант-исследователь отд. эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений ФГБУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. В.И. Шумакова» Минздрава России; e-mail: ypsa89@mail.ru
Горская Елена Михайловна – ст. науч. сотр. отд. эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений ФГБУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. В.И. Шумакова» Минздрава России; e-mail: egorskaya@mail.ru
Корнилов Максим Николаевич – врач-хирург хирургического отд-ния № 1 ФГБУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. В.И. Шумакова» Минздрава России; e-mail: livertranspl@mail.ru
Цирульникова Ирина Евгеньевна – врач-педиатр хирургического отд-ния № 2 ФГБУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. В.И. Шумакова» Минздрава России; e-mail: irish7@inbox.ru
Гончарова Светлана Александровна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаб. микоплазм и L-форм бактерий ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи»; e-mail info@gamaleya.org
Гамова Наталья Александровна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаб. микоплазм и L-форм бактерий ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи»; e-mail: info@gamaleya.org
Раковская Ирина Валентиновна, доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник, заведующая лабораторией микоплазм и L-форм бактерий ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи»; е-mail: rakovskaya35@mail.ru

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.