ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Микробиота ротоглотки при ВИЧ-инфекции: тенденции и проблемы в эпоху антиретровирусной терапии

Матузкова А.Н., Пшеничная Н.Ю., Алешукина А.В., Рындич А.А., Суладзе А.Г., Твердохлебова Т.И., Журавлев А.С., Донцов Д.В.

1) ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; 2) ФГБУ «Национальный исследовательский медицинский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России, Москва, Россия; 3) ФГБОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет), Москва, Россия; 4) ФГБОУ ВПО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России, Ростов-на-Дону, Россия
Цель исследования. Изучение особенностей микробиоты ротоглотки и системного воспаления у больных ВИЧ-инфекцией на фоне антиретровирусной терапии (АРТ) и оценка возможности их коррекции аминодигидрофталазиндионом натрия (АДФNa).
Материалы и методы. В исследование было включено 100 больных ВИЧ-инфекцией, получающих АРТ. Исследование концентрации липополисахарид-связывающего белка (LBP) проводили методом ИФА. Состав микробиоты ротоглотки определяли на бактериологическом анализаторе VITEK-2 соmpact дискодиффузионным методом, а также методом масс-спектрометрии. Пациенты были рандомизированы на 2 группы. Пациентам 1-й группы дополнительно к стандартной АРТ назначали сублингвальные таблетки АДФNa. Эффективность терапии оценивали через 4 нед. по результатам динамики концентрации LBP и изменения состава микрофлоры ротоглотки.
Результаты. У подавляющего большинства больных наблюдался избыточный рост условно-патогенных микроорганизмов, в том числе Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida. При добавлении к стандартной АРТ иммуномодулятора с противовоспалительным эффектом АДФNa отмечено более быстрое снижение концентрации уровня LBP в крови и числа потенциальных патогенов в микробиоте ротоглотки.
Заключение. Курсовой прием препарата АДФNa способствует снижению активности эндотоксинемии и нормализации микробиоты ротоглотки.

Ключевые слова

ВИЧ-инфекция
иммуномодулятор
аминодигидрофталазиндион натрия (АДФNa)
галавит®
микробиота ротоглотки

ВИЧ-инфекция приводит к прогрессирующей потере количества и изменению функций CD4+-лимфоцитов, нарушению иммунного ответа и формированию вторичных оппортунистических инфекций [1–2]. Орофарингеальные оппортунистические инфекции встречаются у большинства ВИЧ-инфицированных пациентов, часто вызывая выраженные поражения, которые способствуют ухудшению питания с последующей потерей массы тела. Эпителий полости рта при ВИЧ-инфекции становится более проницаемым. Исследования на модели приматов показали, что в слизистой оболочке кишечника [3, 4] и полости рта инфекция вирусом иммунодефицита обезьян (SIV) приводит к быстрому изменению генов, обеспечивающих регенерацию эпителия [5]. В дополнение к увеличению проницаемости барьера нарушение регенеративной способности эпителия усиливает восприимчивость к ОИ, способствует нарушению гомеостаза микробиоты. LPS-связывающий белок (LBP) играет центральную роль в ответе на эндотоксинемию и достаточно информативно отражает активность инфекционного процесса при ВИЧ-инфекции.

Микробиом человека представляет собой сложное полимикробное сообщество с тонким балансом [6]. Микробиота состоит из множества аэробных и анаэробных видов, которые продуцируют среду пептидов и полисахаридов, взаимодействуют друг с другом для поддержания стабильной симбиотической микросреды. В здоровых тканях полости рта доступ к эпителию надежно защищен от некомменсальных организмов, частично благодаря физическим и физиологическим барьерам, создаваемым микробиомом. Микробные антигены, такие как липополисахарид, флагеллин, пептидогликан, способствуют этому процессу. Эти антигены по-разному стимулируют механизмы врожденного ответа через рецепторы распознавания антигенов (PRR) и тем самым регулируют местную физиологическую среду [7].

Исследования показали, что состав микробиома ротоглотки изменяется вследствие ВИЧ-инфекции даже на фоне антиретровирусной терапии (АРТ) [8–14]. При ВИЧ-инфекции отмечается повышение количества грибов рода Candida [10, 12, 13], а также увеличение концентрации ДНК ВПЧ, несмотря на проводимую АРТ [14].

Орофарингеальные заболевания, часто наблюдаемые у больных ВИЧ-инфекцией, способствуют кардиометаболическим нарушениям [15]. Предполагается, что избыточный рост патогенных бактерий (например, Fusobacteria, Prevotella, Porphyromonas spp.) вызывает эндотоксемию с последующим системным воспалением [16]. Повторное воздействие эндотоксина приводит к увеличению риска развития фиброза миокарда и смертности [17].

Полученные данные предполагают связь между бактериальными сообществами полости рта и ротоглотки с системными заболеваниями, однако окончательную роль еще предстоит определить, особенно в отношении больных ВИЧ-инфекцией, поскольку проведенные ранее исследования ограничены небольшими размерами выборки и вариациями в методологии анализа. Это подчеркивает необходимость продолжения изучения характеристики микробиома ротоглотки у больных ВИЧ-инфекцией, получающих АРТ, а также поиска новых терапевтических подходов в дополнение к АРТ.

С целью коррекции нарушений микробиоты ротоглотки представляется перспективным изучение эффективности применения препаратов с противовоспалительным и иммуномодулирующим действием. Основные фармакологические эффекты аминодигидрофталазиндиона натрия (АДФNa, галавит®) обусловлены его влиянием на репаративные процессы в тканях, а также снижением образования фиброзной ткани при заживлении, повышением неспецифической резистентности организма к инфекционным заболеваниям [18]. В клинических исследованиях было показано положительное влияние АДФNа на нормализацию показателей иммунного статуса и цитокинового профиля при целом ряде неинфекционных и инфекционных заболеваний, в том числе вирусной этиологии [19–21].

Учитывая вышеизложенное, целью настоящей работы явилось изучение особенностей состава микробиоты ротоглотки и системного воспаления у больных ВИЧ-инфекцией на фоне АРТ и оценка возможности их коррекции АДФNа.

Материалы и методы

В исследовании приняли участие 100 больных ВИЧ-инфекцией в возрасте 39,4 ± 2,2 года. Все пациенты в течение не менее 1 года получали АРТ, назначенную в соответствии с современными нормативными документами, действующими на момент проведения исследования1. Рандомизацию проводили методом случайной выборки. Пациенты были распределены на 2 равные группы по 50 человек в каждой. По основным клиническим параметрам, возрасту и полу, стадии ВИЧ-инфекции, уровню CD4+-лимфоцитов группы были сопоставимы, что и позволило провести в дальнейшем их сравнение (табл. 1). В соответствии с клиническим протоколом исследования клинико-лабораторное обследование пациентов проводили исходно (1-й визит) и через 4 нед. (2-й визит) при плановом диспансерном наблюдении.

100-1.jpg (318 KB)

Пациентам 1-й группы при 1-м визите помимо планового наблюдения и лечения дополнительно к стандартной АРТ назначали сублингвальные таблетки АДФNa: по 2 таблетки 2 раза в день в течение 10 дней, затем по 2 таблетки 2 раза через сутки в течение 10 дней. Эффективность терапии оценивали при 2-м визите через 4 нед. наблюдения по результатам динамики концентрации LBP и изменений микробиома ротоглотки.

Исследование концентрации LBP проводили методом ИФА с использованием тест-системы Hbt Human LBP ELISA Kit, Product Number: HK315 (Hycult biotechnology, Голландия).

Показатели, характеризующие состав и наличие изменений микрофлоры слизистой оболочки задней стенки глотки, определяли на бактериологическом анализаторе VITEK-2 соmpact (BioMerieux, Франция) и дискодиффузионным методом. Поверхность задней стенки ротоглотки была выбрана для забора проб микробиома в связи с тем, что на этом анатомическом участке обычно меньше различий в структуре микробного сообщества по сравнению с другими нишами полости рта, а также эта локализация чаще связана с проявлениями ВИЧ-ассоциированных заболеваний полости рта. Использовали стандартную методику забора мазков с дальнейшим проведением качественно-количественного анализа состава выделенных микроорганизмов. Во время забора материала со слизистой оболочки ротоглотки ни у одного пациента не было клинических проявлений заболеваний полости рта и ротоглотки. Кроме того, ни один из участников исследования не получал одновременного симптоматического или профилактического лечения, в том числе антибактериальными или противогрибковыми препаратами. Для выделения микроорганизмов применяли дифференциально-диагностические среды: кровяной агар, среды Сабуро, Эндо, желточно-солевой агар (ФБУН ГНЦ ПМБ, Оболенск, Россия), UriSelect-4 (Bio-Rad Laboratories Inc., США). Идентификацию условно-патогенных микроорганизмов (УПМ) проводили на базе MS Microflex Biotyper MALDI-ToF (Bruker, Германия).

Группа сравнения была сформирована из 30 практически здоровых лиц сопоставимого возраста и пола.

Для статистической обработки использовали программу SPSS Statistics Base 22.0. Проводили определение средних и медианных величин, стандартного отклонения, ошибки средней, достоверности различий, наличия и силы корреляции признаков. Количественные величины представляли как среднее значение (М) ± ошибка средней (m). Определение достоверности различий при сравнении двух групп из совокупностей с нормальным распределением проводили с помощью t-критерия Стьюдента для двух выборок. Критическую величину уровня значимости p принимали равной 0,05, что соответствует критериям, принятым в медико-биологических исследованиях.

Результаты

При рассмотрении качественного и количественного состава микрофлоры общей когорты пациентов в нашем исследовании у 32,0% выявлены представители УПМ в количестве, не превышающем контрольных значений для здоровых лиц. Доминирующими микроорганизмами в биотопе были коагулазоотрицательные стафилококки (Staphylococcus epidermidis и др.) – 22,5%, коринеформные бактерии (Corynebacterium) – 21,5%, альфа-гемолитические стрептококки – 19,5% и Neisseria flavescens – 6,7%.

У остальных 68,0% больных выявлены нарушения микробного состава слизистой оболочки ротоглотки. Всего выделено 59 культур. Чаще всего (в 51,7% случаев) выявляли ассоциации бактерий: двух- (33,3%), трех- (13,3%), четырех- и более компонентные (5,1%).

Среди УПМ с избыточным ростом преобладали стрептококки альфа-гемолитические – 48,0%, коагулазоотрицательные – 32,4%, коринеформные бактерии (Corynebacterium) – 24,5%, Staphylococcus aureus – 22,5% и пневмококки (S. pneumoniae) – 17,6%. С большой частотой (13,7%) выявляли микроорганизмы рода Streptococcus группы А, обладающие бета-гемолитической активностью (S. pyogenes, S. agalactiae и др.). Альфа-гемолитические стрептококки были представлены S. salivarius, S. mitis, S. viridans, S. mutans, S. ovaries. У 17,6% больных был выделен Streptococcus pneumoniae, у 4,0% – негемолитические стрептококки. В единичных случаях выделяли Streptococcus anginosus, S. оralis и S. peroris.

Род Staphylococcus в большинстве случаев был представлен Staphylococcus aureus, а также коагулазоотрицательными стафилококками. Выявлено большое разнообразие коагулазонегативных стафилококков: S. epidermidis, S. haemolyticus, S. saprophyticus, S. cohnii, S. succinus.

Избыточный рост Neisseria отмечен у 16,7% пациентов. В большинстве случаев были выделены Neisseria flavescens, реже – Neisseria perflava, Neisseria subflava, Neisseria mucosa.

Частота выявления микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae в биотопе ротоглотки составила 10,8%. Это семейство было представлено преимущественно бактериями рода Escherichia, реже (в 1% случаев) –энтерококками и Klebsiella.

В 10,8% случаев определяли микроорганизмы из группы неферментирующих бактерий: Acinetobacter, Pseudomonas aeruginosa и Chryseobacterium spp. P. aeruginosa, обладающая высокой резистентностью к действию антибактериальных препаратов, была выделена только у 1% больных. Также редко выделяли Chryseobacterium spp. (у 1% больных). При изучении чувствительности к антибактериальным препаратам этих бактерий в 50% случаев выявлена устойчивость ко всем антибиотикам и бактериофагам.

Благодаря применению современного метода масс-спектрометрии при проведении идентификации УПМ, у больных ВИЧ-инфекцией были выделены редко встречающиеся микроорганизмы: Gemella haemolysans, Massilia timonae, Ervinia spp., Pannonibacter phragmitetus и Weissella minor.

Грибковая микрофлора выявлена у 19,6% больных и представлена дрожжеподобными грибами рода Candida. У подавляющего большинства пациентов была выделена Candida albicans. Также среди представителей грибковой микрофлоры в единичных случаях были обнаружены Candida cruzei. У 1 пациентки был обнаружен род дрожжей Pichia семейства Saccharomycetaceae.

При сравнении видового и количественного состава основных представителей резидентной аэробной и факультативной аэробной групп микроорганизмов, выделенных из ротоглотки перед началом исследования в обеих группах, достоверных различий не обнаружено (табл. 2).

102-1.jpg (289 KB)

При исследовании через 4 нед. в 1-й группе отмечено снижение доли пациентов с избыточным ростом УПМ с 74,0 ± 6,2 до 49,9 ± 7,1% (р < 0,05). Во 2-й группе в этот же период достоверных отличий не зарегистрировано.

Через 4 нед. наблюдения у пациентов 1-й группы снизилась частота регистрации избыточного роста бета-гемолитических стрептококков (S. pyogenes, S. agalactiae и др.) с 20,0 ± 5,7% при первом визите до 6,0 ± 3,4% при втором (р < 0,05). При повторном визите было зарегистрировано также снижение частоты выявления Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida в количестве более 103 КОЕ/мл (табл. 2).

Примечательно, что в 1-й группе снизилась и частота выявления энтеробактерий с 12,0 ± 4,6% на старте лечения АДФNa до 2,0 ± 2,0% через 4 нед. наблюдения, а также ацинетобактерий с 8,0 ± 3,8% до 0 соответственно (рис. 1, 2). При этом во 2-й группе между данными о частоте выявления энтеробактерий и Acinetobacter, полученными при 1-м и 2-м визитах, достоверных отличий не выявлено.

103-1.jpg (172 KB)

103-2.jpg (82 KB)Концентрация LBP до начала лечения в 1-й и 2-й группах составляла 85,9 ± 3,8 и 86,3 ± 4,8 мкг/ мл соответственно при референсных значениях у здоровых лиц 6,2 ± 1,53 мкг/л (p < 0,01) (рис. 3). При исследовании через 4 нед. в 1-й группе отмечено снижение LBP до 70,9 ± 4,6 мкг/мл (р < 0,05), во 2-й группе достоверных изменений содержания LBP в динамике заболевания не выявлено.

Обсуждение

Изучение микробиома человека продолжает оставаться актуальным вопросом, однако сообщения об изменениях в микробиоте у больных ВИЧ-инфекцией все еще ограничены. Последние достижения, обусловленные внедрением современных методов исследования в микробиологии, включая масс-спектрометрию, значительно увеличили наши диагностические возможности для анализа микробных ассоциаций, включая их функциональные изменения, влияющие на течение заболеваний.

Большинство предыдущих исследований перорального микробиома были спланированы как перекрестные, в которых сравнивали показатели ВИЧ-инфицированных участников с ВИЧ-отрицательным контролем [10–12]. В других работах оценивали продольные изменения орофарингеальной микрофлоры после начала АРТ, которые показывают, что ВИЧ и АРТ приводят к изменениям в специфических бактериальных таксонах в микробиоме ротоглотки. Экспрессия этих бактериальных сообществ может также привести к дальнейшей иммунной активации, поскольку микробная транслокация из полости рта может способствовать формированию системного воспаления, подобно эндотоксинемии, развивающейся при попадании в системный кровоток микробных компонентов из просвета кишечника [22].

Современные литературные данные свидетельствуют о возможности использовать определение концентрации LBP в качестве диагностического биомаркера эндотоксинемии и индикатора системного ответа на LPS при различных инфекционных процессах.

Восстановление микроэкологии ротоглотки имеет важное клиническое значение в предотвращении дальнейшего распространения множества ассоциированных между собой микроорганизмов, предупреждая генерализацию и хронизацию патологических очагов инфекции. В нашем исследовании в 10,8% случаев выявлены представители группы неферментирующих бактерий (Acinetobacter, Pseudomonas aeruginosa и Chryseobacterium spp.), играющие основную роль в развитии внутрибольничных инфекций, особенно у иммунокомпрометированных лиц. Каждый выделенный вид микроорганизмов из группы неферментирующих бактерий способен вызывать рецидивирующие инфекции нижних дыхательных путей у больных с выраженным иммунодефицитным состоянием, особенно при многократных курсах антибиотикотерапии [23]. С такой же частотой (10,8%) у пациентов в ротоглотке присутствовали представители семейства Enterobacteriaceae. Как известно, распространение E. coli может вызвать заболевания желудочно-кишечного тракта, геморрагический колит, гемолитико-уремический синдром, инфекции мочевыводящих и желчевыводящих путей, сепсис [23].

Следует обратить внимание и на выделение в 1% случаев редкого возбудителя оппортунистических микозов – дрожжей рода Pichia. В настоящее время они встречаются у пациентов с ослабленным иммунитетом. Известны случаи интерстициальной пневмонии, инфекционного эндокардита, инфекций мочевыводящих путей и слизистой оболочки полости рта, ассоциированные с Pichia [11].

Таким образом, в большинстве случаев микро­флора ротоглотки больных ВИЧ-инфекцией даже на фоне АРТ имеет существенные различия с составом микробиоты аналогичной локализации у здоровых лиц. Потенциально опасным является наличие представителей оппортунистических инфекций, практически не встречающихся у здоровых лиц. С таким составом микробиоты ротоглотки вполне согласуется и высокий уровень LBP, основной функцией которого является связывание эндотоксинов бактерий.

Проведенное исследование продемонстрировало положительное влияние АДФNa на течение ВИЧ-инфекции при добавлении его к стандартной схеме АРТ. Это выразилось в более быстром снижении уровня маркера антиэндотоксиновой защиты LBP, а также числа потенциальных патогенов в микробиоте ротоглотки – бета-гемолитических стрептококков, Staphylococcus aureus, дрожжеподобных грибов рода Candida, энтеробактерий и ацинетобактерий. Вероятно, способность этого препарата оказывать непосредственное или опосредованное влияние на системный воспалительный ответ при ВИЧ-инфекции, в условиях подавления репликации ВИЧ с помощью АРТ, обусловила его позитивное влияние на течение ВИЧ-инфекции. Для определения продолжительности выявленных эффектов, целесообразности и кратности повторных курсов лечения иммуномодулирующими препаратами на фоне АРТ требуются дальнейшие исследования.

Заключение

У подавляющего большинства больных ВИЧ-инфекцией отмечается активация системы антиэндотоксиновой защиты. Анализ видового состава микробиоты ротоглотки показал, что у большей части таких больных отмечается избыточный рост УПМ, в том числе Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida. Доминирующими микроорганизмами в биотопе являются стрептококки. Чаще всего обнаруживаются многокомпонентные ассоциации УПМ с избыточным ростом.

Снижение концентрации LBP и нормализация состава микробиоты ротоглотки у больных ВИЧ-инфекцией наблюдается при дополнении к стандартной АРТ АДФNa. Патогенетическим обоснованием этого является противовоспалительная и иммуномодулирующая активность препарата, связанная с его способностью регулировать функционально-метаболическую активность клеток врожденного и адаптивного иммунитета (в том числе моноцитов, макрофагов, нейтрофилов, натуральных киллеров) и цитокиновый профиль в условиях подавления репликации ВИЧ на фоне АРТ. Курсовой прием АДФNa способствует повышению эффективности и переносимости АРТ.

Список литературы

  1. Ghannoum M. A., Mukherjee P. K., Jurevic R. J., Retuerto M., Brown R. E., Sikaroodi M., Webster-Cyriaque J., Gillevet P. M. Metabolomics reveals differential levels of oral metabolites in HIV-infected patients: toward novel diagnostic targets. Omics А Journal of Integrative Biology. 2013; 17(1): 5–15. DOI: 10.1089/omi.2011.0035.
  2. Shiboski C. H., Patton L.L., Webster Cyriaque J.Y., Greenspan D., Traboulsi R.S., Ghannoum M., Jurevic R., Phelan J.А., Reznik D., Greenspan J.S. The Oral HIV/AIDS Research Alliance: updated case definitions of oral disease endpoints. J. Оral Pathol. Med. 2009; 38(6): 481–8. DOI: 10.1111/j.1600-0714.2009.00749.x.
  3. Dandekar S., George M.D., Bäumler A.J. Th17 cells, HIV and the gut mucosal barrier. Current Оpinion in HIV and AIDS 2010; 5(2): 173–8. DOI: 10.1097/COH.0b013e328335eda3.
  4. Sankaran S., George M.D., Reay E., Guadalupe M., Flamm J., Prindiville T., Dandekar S. Rapid onset of intestinal epithelial barrier dysfunction in primary human immunodeficiency virus infection is driven by an imbalance between immune response and mucosal repair and regeneration. J. Virol. 2008; 82 (1): 538–45. DOI: 10.1128/JVI.01449-07.
  5. George M. D. Verhoeven D., Sankaran S., Glavan T., Reay E., Dandekar S. Heightened cytotoxic responses and impaired biogenesis contribute to early pathogenesis in the oral mucosa of simian immunodeficiency virus-infected rhesus macaques. Clin. Vaccine Immunol. 2009; 16(2): 277–81. DOI: 10.1128/CVI.00265-08.
  6. Крюков А.И., Кунельская Н.Л., Гуров А.В., Изотова Г.Н., Старостина А.Е., Лапченко А.С. Клинико-микробиологическая характеристика дисбиотических изменений слизистой оболочки полости рта и ротоглотки. Медицинский совет 2016; (6): 32–5.

    Kryukov A.I., Kunel'skaya N.L., Gurov A.V., Izotova G.N., Starostina A.E., Lapchenko A.S.

  7. Alexopoulou L., Kontoyiannis D. Contribution of microbial-associated molecules in innate mucosal responses. Cellular and molecular life sciences: CMLS 2005; 62(12): 1349–358. DOI: 10.1007/s00018-005-5039-x .
  8. Beck J. M., Beck J.M., Schloss P.D., Venkataraman A., Twigg I.H., Jablonski K.A., Bushman F.D. Multicenter comparison of lung and oral microbiomes of HIV-infected and HIV-uninfected individuals. Am. J. Respirat. Crit. Care Med. 2015; 192(11): 1335–44. DOI: 10.1164/rccm.201501-0128OC
  9. Kistler J. O., Arirachakaran P., Poovorawan Y., Dahlén G., Wade W.G. The oral microbiome in human immunodeficiency virus (HIV)-positive individuals. J. Med. Microbiol. 2015; 64(9): 1094–101. DOI: 10.1099/jmm.0.000128.
  10. Saxena D., Li Y., Yang L., Pei Z, Poles M., Abrams W.R., Malamud D. Human microbiome and HIV/AIDS. Curr. HIV AIDS Rep. 2012; 9(1): 44–51. DOI: 10.1007/s11904-011-0103-7.
  11. Mukherjee P.K., Chandra J., Retuerto M., Sikaroodi M., Brown R.E., Jurevic R., Salata R.A., Lederman M.M., Gillevet P.M., Ghannoum M.A. Oral mycobiome analysis of HIV-infected patients: identification of Pichia as an antagonist of opportunistic fungi. PLoS Рathogens 2014; 10(3): e1003996. DOI: 10.1371/journal.ppat.1003996.
  12. Hegde M.C., Kumar A., Bhat G., Sreedharan S. Oral microflora: a comparative study in HIV and normal patients. Indian J. Otolaryngol. 2014; 66(1): 126–32. DOI: 10.1007/s12070-011-0370-z.
  13. Dang A. T., Cotton S., Sankaran-Walters S., Li C., Lee C.M., Dandekar S., Paster B.J., George M.D. Evidence of an increased pathogenic footprint in the lingual microbiome of untreated HIV infected patients. BMC Microbiol. 2012; 12(1): 153. DOI: 10.1186/1471-2180-12-153.
  14. Shiboski C. H., Lee A., Chen H., Webster-Cyriaque J., Seaman T., Landovitz R.J., John M., Reilly N., Naini L., Palefsky J., Jacobson M.A. Human papillomavirus infection in the oral cavity of HIV patients is not reduced by initiating antiretroviral therapy. AIDS (London, England). 2016; 30(10): 1573. DOI: 10.1097/QAD. 0000000000001072.
  15. Noguera-Julian M. Guillén Y., Peterson J., Reznik D., Harris E.V., Joseph S. J. Oral microbiome in HIV-associated periodontitis. Medicine 2017; 96(12): e5821. DOI: 10.1097/MD.0000000000005821.
  16. Liljestrand J. M., Paju S., Buhlin K., Persson G.R., Sarna S., Nieminen M.S. Lipopolysaccharide, a possible molecular mediator between periodontitis and coronary artery disease. J. Сlin. Рeriodontol. 2017; 44(8): 784–92. DOI: 10.1111/jcpe.12751.
  17. Lew W.Y.W., Bayna E., Molle E. D., Dalton N.D., Lai N.C., Bhargava V., Mendiola V., Clopton P., Tang T. Recurrent exposure to subclinical lipopolysaccharide increases mortality and induces cardiac fibrosis in mice. PloS Оne 2013; 8(4): e61057. DOI: 10.1371/journal.pone.0061057
  18. Бусленко А.О., Пшеничная Н.Ю., Алешукина А.В. Изменение состава микрофлоры кишечника при экспериментальной клебсиеллезной инфекции у лабораторных мышей и ее терапии различными иммуномодулирующими препаратами. Врач-аспирант 2015; 71(4.1): 139–44.

    Buslenko A.O., Pshenichnaya N.Yu., Aleshukina A.V.

  19. Покровский А.В., Мхитарова Л.А., Царев В.Н. Прогностическое значение провоспалительных цитокинов при ингаляционном применении галавита в комплексном лечения ХОБ. Вестник Дагестанской государственной медицинской академии 2014; 1(10): 19–23.

    Pokrovsky A.V., Mhitarova L.A., Tsarev V.N.

  20. Бусленко А.О., Алешукина А.В., Пшеничная Н.Ю. Хуказова С.А., Костенко О.Д., Гопаца Г.В., Малышева М.И.Местный цитокиновый профиль у взрослых пациентов с острыми кишечными инфекциями и его коррекция с применением иммуномодулирующей терапии. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2017; (4): 58–64.

    Buslenko A.O., Aleshukina A.V., Pshenichnaya N.Yu., Hukazova S.A., Kostenko O.D., Gopaca G.V., Malysheva M.I.

  21. Бусленко А.О., Пшеничная Н.Ю., Алешукина А.В., Усаткин А.В., Костенко О.Д., Хуказова С.А., Диденко И.В., Усаткина Т.В. Острые кишечные инфекции у взрослых: оценка состояния интестинальной микрофлоры и эффективности аминодигидрофталазиндиона натрия в составе их комплексной терапии. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2016; (4): 57–64.

    Buslenko A.O., Pshenichnaya N.Yu., Aleshukina A.V., Usatkin A.V., Kostenko O.D., Hukazova S.A., Didenko I.V., Usatkina T.V.

  22. Матузкова А.Н., Пшеничная Н.Ю., Суладзе А.Г., Досягаева Л.И., Твердохлебова Т.И., Яговкин Э.А. Клинико-диагностическое значение оценки показателей системного воспаления у больных с ВИЧ-инфекцией. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии 2018; 10(3): 64–71.

    Matuzkova A.N., Pshenichnaya N.Yu., Suladze A.G., Досягаева Л.И., Твердохлебова Т.И., Яговкин Э.А.

  23. Джораева С.К., Гончаренко В.В., Щеголева Е.В., Щербакова Ю.В., Безрученко А.А. Состав и функции микробиоценозов различных биотопов макроорганизма и клиническая значимость их нарушений. Дерматология и венерология 2015; (2): 5–19.

    Dzhoraeva S.K., Goncharenko V.V., Shhegoleva E.V., Shherbakova Yu.V., Bezruchenko A.A.

Об авторах / Для корреспонденции

Матузкова Анна Николаевна – врач-инфекционист поликлинического отделения Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; е-mail: matuzkova@yandex.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-5980-3436
Пшеничная Наталья Юрьевна – д.м.н., профессор, руководитель международного отдела по организации оказания медицинской помощи ФГБУ «Национальный исследовательский медицинский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России, Москва, Россия; e-mail: natalia-pshenichnaya@yandex.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0003-2570-711X.
Алешукина Анна Валентиновна – д.м.н., старший научный сотрудник, заведующая лабораторией вирусологии, микробиологии и молекулярно-биологических методов исследований ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; e-mail: niimicrodouble@ yandex.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-9797-2441
Рындич Антонина Алексеевна – к.м.н., начальник Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; e-mail: hivrost@mail.ru, ORCID: http://orcid.org/0000-0002-9568-7794
Суладзе Александр Георгиевич – к.м.н., врач-инфекционист Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; e-mail: hivrost@mail.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-9051-1220
Твердохлебова Татьяна Ивановна – д.м.н., доцент, директор ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; e-mail: niimicrodouble@yandex.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-4280-6702
Журавлев Андрей Сергеевич – студент Центра инновационных образовательных программ (ЦИОП) «Медицина будущего» ФГБОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет), Москва, Россия; e-mail: Andrew0898@yandex.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9130-707
Донцов Денис Владимировнич – д.м.н., профессор, доцент кафедры инфекционных болезней ФГБОУ ВПО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России, Ростов-на-Дону, Россия; e-mail: d¬_dontcov@mail.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0003-4938-2962

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.