ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Современное состояние и перспективы специфической профилактики чумы

Щипелева И.А., Кретенчук О.Ф., Коршенко В.А., Марковская Е.И.

Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия
В обзоре обоснована актуальность исследований, посвященных изучению специфической профилактики чумы. Проанализированы публикации из баз данных электронных библиотек PubMed, e-library, КиберЛенинка и др. Представлены сведения о существующих направлениях разработки противочумных вакцин, современных методах обеспечения специфической защиты от чумы и перспективах ее совершенствования

Ключевые слова

чума
Yersinia pestis
вакцина
специфическая профилактика

В настоящее время мир переживает катастрофическое влияние на все аспекты деятельности человечества пандемии, вызванной коронавирусом SARS-CoV-2. Глобальное распространение COVID-19, связанное с тесным международным взаимодействием, активной внешней и внутригосударственной миграцией населения, военными конфликтами, продемонстрировало не только потенциальную, но и реальную опасность заноса (завоза) особо опасных инфекций в любой регион мира.

Проблемы, связанные с COVID‑19, отодвинули на второй план другие инфекционные болезни, способные вызывать чрезвычайные ситуации международного масштаба. Одной из таких особо опасных, высококонтагиозных, способных к быстрому антропогенному распространению инфекций является чума (Ч), известная человечеству не менее 25 столетий. Пандемии Ч уносили миллионы человеческих жизней, опустошали города, вызывали гибель государств и исчезновение целых народов [1]. Характеризуя современное состояние заболеваемости Ч в мире, необходимо отметить, что 6743 случаев Ч с летальностью более 13% было зарегистрировано на территории 11 государств Африки, Азии, Южной и Северной Америки только за последнее десятилетие [2]. По данным доступной литературы, в последние годы наиболее сложная эпидемическая ситуация по Ч складывалась на территории Республики Мадагаскар, где в 2017 г. имела место преимущественно городская крупная вспышка легочной Ч, поразившая столицу республики [3]. Участники семинара, состоявшегося в 2018 г. в Париже, высказали мнение о том, что Ч по-прежнему остается угрозой для человечества, призывали в срочном порядке повысить приоритетность исследований в области изучения этой «забытой» инфекции и ее вспышку на Мадагаскаре в 2017 г. рассматривать как переломный момент в эпидемиологии этого заболевания [4].

Неспокойной по Ч остается ситуация и в странах, непосредственно граничащих с Россией. Высокая эпизоотическая активность, регистрировавшаяся в последние годы в некоторых природных очагах на территории Республики Казахстан и в Киргизской Республике, прогнозировалась и на 2021 г. [2].

Из существующих в Российской Федерации 11 природных очагов Ч наибольшую активность в последнее десятилетие проявляют Горно-Алтайский и Тувинский. Эпидемиологическое благополучие по Ч на этих территориях обеспечивается в результате выполнения научно обоснованного комплекса профилактических (противоэпидемических) мероприятий, включающих своевременное проведение в плановом порядке вакцинации и ревакцинации населения, постоянно проживающего на территории очага, и временного, прибывающего на эндемичную территорию в период активизации основного носителя Ч [2, 5].

Опасность заноса (завоза) высоковирулентных штаммов чумного микроба с территорий трансграничных очагов и других регионов мира, неблагополучных по Ч, активность природных очагов внутри страны, экономическая деятельность в зонах природных очагов, развитие международного и внутреннего туризма способствуют повышению риска возникновения случаев заболевания в Российской Федерации.

В современной профилактике инфекционных заболеваний очень важную роль играет вакцинация. Однако после прекращения производства инактивированной чумной вакцины USP (США), обладавшей большим количеством недостатков, ВОЗ исключила из своих рекомендаций проведение вакцинации населения в активных природных очагах Ч, оставив только группы повышенного риска (например, сотрудников лабораторий, которые постоянно подвергаются риску заражения, и работников здравоохранения) [6].

В Российской Федерации для профилактики Ч у проживающих на энзоотичных по ней территориях взрослых и детей с 2 лет, а также лиц, работающих с живыми культурами возбудителя Ч, зарегистрирована вакцина чумная живая сухая (лиофилизат культуры вакцинного штамма Yersinia pestis ЕV линии НИИЭГ для приготовления суспензии для инъекций, накожного скарификационного нанесения и ингаляций и таблетки для рассасывания) и вакцина чумная живая (лиофилизат для приготовления суспензии для инъекций, накожного скарификационного нанесения и ингаляций). Однако безопасность применяемой в настоящее время вакцины признана относительной [7–9].

В 2018 г. в России зарегистрирована состоящая из рекомбинантных капсульного антигена и V-антигена чумного микроба вакцина чумная молекулярная микроинкапсулированная (лиофилизат для приготовления суспензии для подкожного введения). Она предназначена для профилактики Ч личного состава войск Минобороны России и МЧС, действующих в чрезвычайных ситуациях; населения в возрасте от 18 до 58 лет, проживающего на территориях природных очагов Ч (при наличии энзоотий Ч среди грызунов); а также в случае угрозы биотеррористического акта. По мнению авторов, этот препарат может быть использован для ревакцинации после первичной вакцинации живой чумной вакциной EV с учетом индивидуального интегрированного показателя гуморального и клеточного иммунитета и будет во многом способствовать устранению нежелательных реакций организма на введение живой вакцины [10].

Цель исследования – анализ данных литературных источников, посвященных различным аспектам специфической профилактики Ч.

Повторяющиеся вспышки Ч, появление новых технологий создания вакцин, осознание необходимости в противочумных вакцинах в регионах, которые не могут быть обеспечены своевременной диагностикой и лечением (например, отдаленные сельские районы; регионы, находящиеся в условиях ограниченных ресурсов; зоны конфликтов и т. д.), обусловили возобновление интереса мировой науки в целом и ВОЗ в частности к разработке вакцин нового поколения против Ч. В 2018 г. на состоявшемся под эгидой ВОЗ рабочем совещании «Испытание эффективности вакцин против чумы: конечные точки, пробный дизайн, выбор площадки» были обозначены основные принципы оптимизации создания и испытания нового поколения препаратов для специфической профилактики Ч [11, 12]. На момент проведения совещания было заявлено о 17 прототипах вакцин против этого заболевания.. Препараты для специфической профилактики Ч, над которыми работают ученые во всем мире, разрабатываются на разных технологических платформах, у каждой из которых есть свои преимущества и недостатки.

Многолетнее использование живой вакцины на основе вакцинного штамма Y. pestis EV линии НИИЭГ для профилактики Ч позволяет считать этот препарат достаточно эффективным, но не лишенным ряда недостатков. Основным направлением совершенствования препарата вакцины чумной живой является оптимизация биотехнологии ее изготовления, в том числе за счет контроля основных показателей качества выпускаемой вакцины и стабильности препарата в процессе хранения [13], повышения и сохранения показателя живых микробных клеток в процессе получения биомассы, оптимизации ее биологических и физических свойств, их стабилизации в процессе лиофильной консервации и последующего хранения [14], обязательного использования отраслевого стандартного образца (ОСО) при проведении испытания специфической активности и термостабильности производственных серий вакцины [15], усовершенствования технологии концентрирования микробных клеток [16], внедрения в производство новых экспериментальных питательных сред [17], включения в технологический процесс производства этапа «анимализации» [18]. Не менее важными аспектами совершенствования живой чумной вакцины являются снижение реактогенности и аллергизирующего действия, а также повышение продолжительности вызываемого иммунитета и защитных свойств при заражении атипичными штаммами возбудителя Ч. В литературе представлены результаты изучения защитного действия сочетанного применения живой чумной вакцины и различных иммуномодуляторов, свидетельствующие о том, что оптимальным препаратом для повышения иммуногенных и протективных свойств вакцины чумной живой является полиоксидоний [19, 20]. Показано, что включение его в схему иммунизации стимулирует как раннюю фазу антигенспецифического иммунного ответа, ускоряя появление и исчезновение лимфоцитов с рецепторами к F1 Y. рestis, так и его эффекторную фазу, усиливая антительный ответ [21]. В экспериментах комплексного морфофункционального контроля состояния органов периферической иммунной системы при сочетанном использовании живой чумной вакцины и иммуномодулятора установлено стимулирующее влияние полиоксидония на процессы пролиферации клеток в Т-зонах лимфоидных органов, на активацию в них субпопуляций Т- и В-лимфоцитов [22]. Методом проточной цитометрии установлено, что предварительное введение полиоксидония перед противочумной вакцинацией стимулирует фагоцитарную и цитокинпродуцирующую активность лейкоцитов крови по отношению к чумному микробу [23].

Для совершенствования стратегии специфической профилактики Ч в природных очагах этой инфекции осуществляются иммунологические исследования лиц, вакцинированных живой чумной вакциной. Результаты иммунологического мониторинга, включающего определение продукции IFN-γ, IL-4, TNF-α клетками крови, титров специфических антител к капсульному антигену F1 чумного микроба и концентраций основных классов иммуноглобулинов в сыворотке крови, а также иммунофенотипирование лимфоцитов крови (CD3, CD4, CD8, CD16, CD19), подтвердили относительную безопасность применения живой чумной вакцины. Определена направленность иммунологической перестройки у привитых, охарактеризованы границы колебаний индивидуальных показателей иммунного ответа на вакцину, выявлены лица как с нормальной, так и со сниженной или повышенной иммунологической реактивностью. Учет данных иммунологического мониторинга обеспечивает возможность прогнозирования результатов вакцинации по эпидемическим показаниям, выделяя группы с нормальной, высокой и низкой иммунной реактивностью на антигены чумного микроба [24–27]. Комплексный анализ факторов [возраст, пол, состояние здоровья, количество предыдущих вакцинаций против чумы, группа крови, концентрация специфических антител к капсульному антигену (F1) чумного микроба, определение спонтанной и индуцированной продукции маркерных цитокинов (IFN-γ, TNF-α и IL-4) методом ИФА и генов HLA II класса методом ПЦР в режиме реального времени], влияющих на иммунологическую реактивность лиц, привитых живой чумной вакциной, позволяет рассматривать возможности внедрения на территории природных очагов Ч персонифицированного подхода к специфической профилактике этой инфекции [28]. Для совершенствования системы иммунопрофилактики и повышения ее роли в общем комплексе средств борьбы с Ч в качестве подхода к моделированию системы иммунологических реакций предложено использовать нейросетевое моделирование, которое позволяет провести углубленный анализа экспериментальных данных, создать математическую модель и с высокой точностью прогнозировать эффективность повторного применения различных препаратов специфической профилактики [29].

Для решения проблемы реактогенности и остаточной вирулентности живой противочумной вакцины огромные усилия научное сообщество направляет на создание субъединичных препаратов для специфической профилактики Ч [9, 30, 31]. На сегодняшний день основной объем исследований, доведенных до стадии доклинических и клинических испытаний, представляют разработки прототипов противочумных вакцин на основе рекомбинантных протективных антигенов: фракции 1 (F1) – капсульного антигена и V антигена (LcrV) – компонента системы секреции III типа [9, 30, 32–38]. Их совместное применение обеспечивает активацию дендритных клеток, что способствует формированию клеточного иммунитета и усилению протективного эффекта в отношении, в том числе, аэрогенного инфицирования биомоделей высоковирулентными штаммами Y. pestis [30, 32]. Наиболее значительных успехов в этом направлении добились ученые США, Великобритании, Китая и России. Вакцина, разработанная ФБУН «Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии» Роспотребнадзора (ГНЦ ПМБ), является в мире первым зарегистрированным препаратом такого уровня [10].

Значительное количество разработок вакцин против Ч посвящено созданию векторных препаратов на платформе безопасных штаммов бактерий, реплицирующихся и нереплицирующихся вирусов. В качестве векторов для клонирования детерминант иммуногенности патогенного микроорганизма используют безопасные штаммы, прошедшие доклинические или клинические испытания [9]. В качестве бактериальных векторов чаще всего используют аттенуированные штаммы Y. pseudotuberculosis и Salmonella typhimurium, в которые встраивают гены, кодирующие образование протективных антигенов F1, V, Psa-антиген и др. [9, 30, 37, 39, 40]. Наиболее впечатляющие, на взгляд авторов, результаты в этом направлении получены французскими учеными, предложившими прототип живой однодозовой вакцины для перорального применения на платформе Y. pseudotuberculosis [33, 41].

Для достижения более длительной персистенции вакцины в организме и индукции Т-клеточного ответа, в частности продукции цитотоксических Т-лимфоцитов, в качестве вектора применяют вирусы. В литературе представлены данные об использовании в качестве векторов поксвирусов, вируса везикулярного стоматита, вируса табачной мозаики, аденовирусов [42, 43]. Значительный успех был достигнут в разработке трехвалентной вакцины на основе аденовируса серотипа 5 с дефектом репликации [43].

Создание векторных вакцин – многообещающее направление, однако оно имеет свои сложности. Так, снижение иммуногенности препарата может быть связано с тем, что рекомбинантный продукт не всегда имеет ту же структуру, что и нативный антиген. Перспективой развития данного направления исследований считается использование векторов, в которые будут встроены не только гены, контролирующие синтез протективных антигенов, но и гены, кодирующие синтез медиаторов иммунного ответа [30].

Для решения проблемы повышения протективности вакцин, разработанных на основе антигенов F1 и V, особенно в случае возможного заражения возбудителем Ч с Fra-фенотипом, рядом авторов были представлены результаты оценки защитного потенциала различных антигенов, наиболее перспективными среди которых оказались активатор плазминогена – Pla, белки внешней мембраны – OmpA, OmpX, Ail [9, 43–45].

Результаты работ отечественных и зарубежных исследователей свидетельствуют о перспективности использования везикул наружных мембран и других препаратов поверхностных структур клеток чумного микроба в качестве основы для конструирования химических бесклеточных вакцин [46, 47]. Наиболее перспективными при создании новых гипоаллергенных вакцин считают белки-аллергены, относящиеся к группе экстрацеллюлярных [48]. На основе пустых оболочек клеток грамотрицательных бактерий, лишенных цитоплазмы, но сохраняющих неизменными все морфологические и структурные особенности их живых предшественников, специалисты ГНЦ ПМБ предложили новую систему доставки вакцин – технологию «бактериальных теней (призраков)». Такой способ обеспечивал индукцию как клеточного, так и гуморального ответа, причем в вариантах «бактериальных теней» с полностью разрушенным пептидогликановым скелетом отмечено усиление иммунного ответа за счет образования множества молекул мурамилдипептида (N-ацетилмурамил-L-аланил-D-изоглутамина), выполняющего роль мельчайших адъювантных фрагментов [49].

Значительных успехов достигли разработчики многокомпонентных ДНК-вакцин, сконструировавшие препарат, содержащий модифицированный ген lcrV и сигнальную последовательность человеческого тканевого активатора плазминогена (tPA) и обеспечивающий защиту мышей линии BALB/c от интраназального заражения летальной дозой Y. pestis; а также препарат, содержащий плазмиду, кодирующую синтез IL-12 и F1-LcrV-слитного белка, обеспечивающий 50% защиту мышей от аэрозольного заражения чумой [30, 50, 51].

При разработке вакцин большое внимание уделяется повышению протективности за счет использования различных адъювантов. Наиболее значимые результаты, свидетельствующие о возможности стимулирования гуморального и клеточного звеньев иммунного ответа, получены при совместном применении субъединичного препарата rF1-V и адъювантов: гидроксида алюминия и ко-стимулирующей молекулы SA-4-1BBL [51–56].

Несмотря на все усилия по созданию субъединичных препаратов для специфической профилактики Ч, на сегодняшний день живые аттенуированные вакцины против Y. pestis стимулируют гораздо более эффективный иммунитет, по напряженности приближающийся к постинфекционному и защищающий от заражения различными по антигенному составу вариантами патогена [57]. Субъединичные вакцины пока так и не смогли приблизиться по эффективности к живым вакцинам, в частности, из-за отсутствия у них патоген-ассоциированных молекулярных структур, направляющих иммунный ответ макроорганизма по Th1-пути с преимущественным развитием клеточных реакций [9].

В связи с развитием современных методов генетической модификации штаммов, позволяющих целенаправленно снижать вирулентность, сохраняя при этом иммуногенность, поиск оптимальных способов аттенуации при конструировании вакцинных штаммов может стать кратчайшим путем к усовершенствованным живым вакцинам нового поколения. Направленный сайт-специфический мутагенез без использования маркеров антибиотикорезистентности, привлечение геномного, протеомного и транскрипционного анализов возбудителя для определения рациональной стратегии конструирования авирулентных штаммов выводят на новый уровень процесс создания живых вакцин. Основными направлениями исследований в данной области являются снижение реактогенности и повышение иммуногенности штаммов Y. pestis с характерной делецией в области пигментации и прецизионная аттенуация природных вирулентных штаммов Y. pestis [9, 36, 58–62].

Отсутствие зарегистрированных противочумных вакцин, обеспечивающих надежную длительную защиту против легочной чумы, и потенциальная опасность применения Y. pestis в качестве агента биотерроризма подчеркивают актуальность и настоятельную необходимость разработки более эффективных вакцин против легочной Ч [58, 63].

Большее внимание исследователи уделяют совершенствованию способов доставки вакцин [64] и внедрению альтернативных способов введения вакцин в организм. Представлены результаты модельных экспериментов по конструированию прототипа трансдермального варианта чумной химической вакцины [65]. В экспериментах на животных получены положительные результаты противочумной вакцинации с использованием растений в качестве биореакторов [66]. Разработаны вакцинные препараты для перорального и интраназального применения. Перспективность применения таких методов введения вакцины на сегодняшний день наиболее экспериментально обоснована [33, 41–43]. Такие способы презентации вакцины, обеспечивая непосредственный контакт со слизистыми оболочками, усиливают формирование гуморального и мукозального противочумного иммунитета и тем самым повышают эффективность иммунопрофилактики при аэрозольном пути заражения Чй. В экстренных ситуациях зарубежными исследователями [38] был предложен двойной путь вакцинации: подкожный – первичная доза, пероральный – бустерная доза в капсуле с энтеросолюбильным покрытием. Разработанный способ введения вакцины VypVaxDuo индуцировал у мышей Balb/c ранний иммунитет через 14 дней после первичной иммунизации, а полную защиту – через 25 дней.

До настоящего времени сохраняется актуальность исследований, посвященных пассивной иммунотерапии Ч. Описаны положительные результаты экспериментов по получению специфичных моноклональных антител к антигенам Y. pestis V и F1. Введение комбинации данных моноклональных антител защищало мышей на моделях бубонной и легочной Ч, проявляя при этом синергизм [36].

Быстрое и эффективное создание иммунной прослойки, прежде всего среди групп населения с наибольшим риском заражения (медицинские работники, служба охраны порядка, транспорта и пр.), приобретает особое значение при угрозе антропогенного распространения Ч, в том числе связанного с чрезвычайными ситуациями техногенного или биотеррористического характера [58, 63]. Перспективность иммунизации потенциально инфицированных, находящихся в инкубационном периоде заболевания, живыми и субъединичными вакцинами экспериментально обоснована российскими и зарубежными учеными [67–70]. В то же время известно, что в отсутствие адекватной антибиотикотерапии легочная и септическая формы Ч приводят к смертельному исходу в течение 1–3 сут от начала заболевания. В связи с этим доказано положительное влияние вакцинации на эффективность одновременно проводимой антибактериальной терапии, в том числе заведомо недостаточно эффективными антибактериальными препаратами. Экспериментально установлено, что вакцинация может стать средством снижения смертности в случае применения в качестве агента биотерроризма антибиотикоустойчивого штамма Y. pestis, обеспечивая создание резерва времени для определения антибиотикочувствительности возбудителя и замены неэффективного антибиотика на эффективный [41, 68, 70]. Таким образом, необходимостью купирования инфекционного процесса у потенциально инфицированных и скорейшего создания иммунной прослойки среди населения, прежде всего в группах риска, определяется приоритетность проведения в системе противоэпидемических мероприятий сочетанной экстренной профилактики антибактериальными препаратами и иммунизации.

Учитывая, что в настоящее время не создано субъединичных вакцин против Ч, превосходящих по эффективности живые вакцины [58], а также невозможность использования живых вакцин для сочетанного применения с экстренной профилактикой антибактериальными препаратами ввиду их чувствительности к антибиотикам, актуальными остаются разработки антибиотикорезистентных живых вакцин и схем их применения [71, 72].

Заключение

Использование достижений биологических и медицинских наук для определения рациональной стратегии конструирования иммунобиологических препаратов позволило в последние годы достичь определенного прогресса в создании не только субъединичных вакцин на основе рекомбинантных антигенов, но также живых и векторных препаратов на платформе безопасных штаммов бактерий и реплицирующихся и нереплицирующихся вирусов. Однако на сегодняшний день такая усовершенствованная противочумная вакцина еще не сконструирована. В условиях быстрого глобального распространения инфекций и высокой смертности, связанной с ними, наличие и разработка новых противочумных вакцин, схем и методов специфической профилактики Ч, включая схемы сочетанной экстренной профилактики антибактериальными препаратами и иммунизации, являются критически важными задачами, требующими решения.

Список литературы

  1. Гениберг Т.В. Пандемии и их влияние на национальные экономические системы. Вестник ТОГУ 2020; 4(59): 63–72 DOI?
  2. Попов Н.В., Ерошенко Г.А., Карнаухов И.Г., Кузнецов А.А., Матросов А.Н., Иванова А.В. и др. Эпидемиологическая ситуация по чуме в 2020 г. Прогноз эпизоотической активности природных очагов чумы Российской Федерации и других стран СНГ на 2021 г. Проблемы особо опасных инфекций 2021; (1): 52–62. DOI: 10.21055/0370-1069-2021-1-52-62
  3. Randremanana R., Andrianaivoarimanana V., Nikolay B., Ramasindrazana B., Paireau J., Ten Bosch Q.A. et al. Epidemiological characteristics of an urban plague epidemic in Madagascar, August-November, 2017: an outbreak report. Lancet Infect. Dis. 2019; 19(5): 537–45. DOI: 10.1016/S1473-3099(18)30730-8
  4. Vallès X., Stenseth N.C., Demeure C., Horby P., Mead P.S., Cabanillas O. et al. Human plague: An old scourge that needs new answers. PLoS Negl. Trop. Dis. 2020; 14(8): e0008251. DOI: 10.1371/journal.pntd.0008251
  5. Попова А.Ю., Кутырев В.В., Балахонов С.В., Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Пакскина Н.Д. и др. Координация мероприятий противочумных учреждений Роспотребнадзора по оздоровлению Горно-Алтайского высокогорного природного очага чумы в 2016 г. Проблемы особо опасных инфекций 2016; 4: 5–10. DOI: 10.21055/0370-1069-2016-4-5-10
  6. Plague. http://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/plague. Accessed May 5, 2021.
  7. Бывалов А.А., Кутырев В.В. Современное состояние проблемы совершенствования средств вакцинопрофилактики чумы. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии 2011; (2): 97–104
  8. Quenee L., Hermanas T., Ciletti N., Louvel H., Miller N., Elli D. et al. Hereditary hemochromatosis restores the virulence of plague vaccine strains. J. Infect. Dis. 2012; 206(7): 1050–8. DOI: 10.1093/infdis/jis433. 10
  9. Микшис Н.И., Кутырев В.В. Современное состояние проблемы разработки вакцин для специфической профилактики чумы. Проблемы особо опасных инфекций 2019; (1): 50–63. DOI: 10.21055/0370-1069-2019-1-50-63
  10. Дятлов И.А., Анисимов А.П., Храмов М.В., Дунайцев И.А., Ажермачева Н.И., Сомов А.Н. и др. Вакцина чумная молекулярная микроинкапсулированная (ВЧММ). Бактериология 2018; 3(1): 74–6. Dуatlov I.A., Anisimov A.P., Hramov M.V., Dunajcev I.A., Azhermacheva N.I., Somov A.N. et al.
  11. WHO Target Product Profile for Plague Vaccines. http://www.who.int/blueprint/what/norms-standards/Plague_vaccines_ workshop-23-april-2018/en/
  12. Копылов П.Х., Анисимов А.П. Современные требования к чумным вакцинам. Бактериология 2019; 4(4): 42–6. DOI: 10.20953/ 2500-1027-2019-4-42-46
  13. Зуенко А.А., Абзаева Н.В., Гостищева С.Е., Старцева О.Л., Гридина Т.М., Богданова Ю.В. и др. Анализ стабильности производства вакцины чумной живой и основных показателей качества препарата. Проблемы особо опасных инфекций 2018; (4): 54–7. DOI: 10.21055/0370-1069-2018-4-54-57
  14. 14 Будыка Д.А., Абзаева Н.В., Гостищева С.Е., Ракитина Е.Л., Иванова Г.Ф., Фисун А.А. Биотехнология стабилизации живых микроорганизмов в биомассе и в препарате чумной вакцины. Инфекция и иммунитет 2016; 6(1): 87–92. DOI: 10.15789/2220-7619-2016-1-87-92
  15. Касина И.В., Алексеева С.А., Фадейкина О.В., Немировская Т.И., Волкова Р.А. Аттестация новой серии отраслевого стандартного образца для контроля специфической активности и термостабильности вакцины чумной живой. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение 2018; 18(4): 262–7. DOI: 10.30895/2221-996X-2018-18-4-262-267
  16. Шаров Д.А., Лещенко А.А., Багин С.В., Логвинов С.В., Мохов Д.А., Ежов А.В. и др. Усовершенствование технологии концентрирования микробных клеток в производстве вакцины чумной живой, таблетки для рассасывания. Проблемы особо опасных инфекций 2020; (4): 139–45. DOI: 10.21055/0370-1069-2020-4-139-145
  17. Гостищева С.Е., Абзаева Н.В., Иванова Г.Ф., Катунина Л.С., Ростовцева Д.В., Костроминов А.В. Мониторинг стабильности вакцины чумной живой, приготовленной с использованием питательной среды на основе гидролизата кукурузного экстракта сгущенного. Проблемы особо опасных инфекций 2019; (4): 37–40. DOI: 10.21055/0370-1069-2019-4-37-40
  18. Пономарева Т.С. Влияние «анимализации» на специфическую активность живой чумной вакцины в модельных опытах на животных. J. Clin. Med. Kaz. 2016; 1(39): 25–9.
  19. Гончарова А.Ю., Бугоркова С.А., Кудрявцева О.М., Кожевников В.А., Кравцов А.Л., Каштанова Т.Н., Щуковская Т.Н. Экспериментальная оценка эффективности применения вакцинного штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ в сочетании с иммуномодуляторами. Проблемы особо опасных инфекций 2020; (2): 71–7. DOI: 10.21055/0370-1069-2020-2-71-77
  20. Щуковская Т.Н., Курылина А.Ф., Шавина Н.Ю., Бугоркова С.А. Влияние полиоксидония, Poly(I:C), даларгина на защитное действие вакцинного штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ при экспериментальной чуме. Российский иммунологический журнал 2020; 23(1): 41–50. DOI: 10.46235/1028-7221-005-IOP
  21. Пономарева Т.С., Дерябин П.Н., Каральник Б.В., Тугамбаев Т.И., Атшабар Б.Б., Денисова Т.Г. и др. Влияние полиоксидония на иммуногенную и протективную активность живой чумной вакцины. Иммунология 2014; (5): 286–90.
  22. Бугоркова С.А., Курылина А.Ф., Щуковская Т.Н. Морфофункциональная характеристика иммунокомпетентных органов мышей линии BALB/c при иммунизации вакцинным штаммом Yersinia pestis EV НИИЭГ на фоне иммуномодуляции. Проблемы особо опасных инфекций 2017; (2): 58–62. DOI: 10.21055/0370-1069-2017-2-58-62
  23. Клюева С.Н., Кравцов А.Л., Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Кожевников В.А., Гончарова А.Ю. Фагоцитарная и цитокин-продуцирующая активность лейкоцитов крови мышей линии BALB/C, привитых против чумы на фоне иммуномодуляции полиоксидонием. Российский иммунологический журнал 2019; 13(22(4)): 1412–20. DOI: 10.31857/S102872210007044-3
  24. Корытов К.М., Войткова В.В., Дубровина В.И., Носков А.К., Мищенко А.И., Михайлов Е.П. и др. Оценка иммунологической эффективности вакцинации населения против чумы в Горно-Алтайском высокогорном природном очаге. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика 2018; 17(6): 87–97. DOI: 10.31631/2073-3046-2018-17-87-97
  25. Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Микшис Н.И., Клюева С.Н., Кудрявцева О.М., Кравцов А.Л. и др. Комплексное иммунологическое исследование вакцинированных живой чумной вакциной лиц, проживающих на территории Прикаспийского песчаного очага чумы в Республике Калмыкия. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика 2018; 17(3): 38–50. DOI: 10.31631/2073-3046-2018-17-3-38-50
  26. Корытов К.М., Войткова В.В., Дубровина В.И., Пятидесятникова А.Б., Носков А.К., Глушков Э.А. и др. Оценка эффективности вакцинации населения против чумы в Тувинском природном очаге. Acta Biomedica Scientifica 2019; 4(5): 31–7. DOI: 10.29413/ABS.2019-4.5.5
  27. Бугоркова С.А., Клюева С.Н., Кудрявцева О.М., Топорков В.П., Щуковская Т.Н., Кравцов А.Л. и др. Иммунологический мониторинг вакцинированных против чумы в Прикаспийском песчаном природном очаге для оценки и управления рисками здоровью населения. Анализ риска здоровью 2020; (4): 121–9. DOI: 10.21668/health.risk/2020.4.14
  28. Кудрявцева О.М., Гончарова А.Ю., Бугоркова С.А., Кожевников В.А., Щуковская Т.Н., Каштанова Т.Н. и др. Анализ факторов, влияющих на иммунологическую реактивность лиц, вакцинированных живой чумной вакциной. Здоровье населения и среда обитания 2020; 6(327): 17–24. DOI: 10.35627/2219-5238/2020-327-6-17-24
  29. Сафронов В.А., Лопатин А.А., Дальвадянц С.М. Искусственные нейронные сети в прогнозировании эффективности средств специфической профилактики чумы. Проблемы особо опасных инфекций 2007; 93: 76–81.
  30. Фирстова В.В., Караулов А.В., Дятлов И.А. Современные направления разработок противочумных вакцин. Иммунология 2017; 38(2): 100–7. DOI: 10.18821/0206-4952-2017-38-2-100-107
  31. Liu L., Wei D., Qu Z., Sun L., Miao Y., Yang Y. et al. A safety and immunogenicity study of a novel subunit plague vaccine in cynomolgus macaques. J. Appl. Toxicol. 2018; 38(3): 408–17. DOI: 10.1002/jat.3550
  32. Williamson E.D., Oyston P.C.F. The natural history and incidence of Yersinia pestis and prospects for vaccination. J. Med. Microbiol 2012; 61(7): 911–8. DOI: 10.1099/jmm.0.037960-0
  33. Derbise A., Hanada Y., Khalifé M., Carniel E., Demeure C.E. Complete protection against pneumonic and bubonic plague after a single oral vaccination. PLoS Negl. Trop. Dis. 2015; 9(10): e0004162. DOI: 10.1371/journal.pntd.0004162
  34. Назарова Е.Л., Дятлов И.А., Поздеев Н.М., Демьянова В.Т., Парамонов И.В., Рылов А.В. и др. Генетические маркеры иммунного ответа на антигены Yersinia pestis F1 и V микрокапсулированной чумной вакцины. Российские биомедицинские исследования 2017; 2(2): 19–28.
  35. Копылов П.Х., Светоч Т.Э., Иванов С.А., Комбарова Т.И., Перовская О.Н., Титарева Г.М., Анисимов А.П. Особенности хроматографической очистки и протективности изоформ LcrV Yersinia pestis. Прикладная биохимия и микробиология 2019; 55(5): 471–80. DOI: 10.1134/S0555109919040081
  36. Sun W., Singh A.K. Plague vaccine: recent progress and prospects. NPJ Vaccines 2019; (4): 11. DOI: 10.1038/s41541-019-0105-9
  37. Derbise A., Guillas C., Gerke C., Carniel E., Pizarro-Cerdà J., Demeure C.E. Subcutaneous vaccination with a live attenuated Yersinia pseudotuberculosis plague vaccine. Vaccine 2020; 38(8): 1888–92. DOI: 10.1016/j.vaccine.2020.01.014
  38. Moore B.D., New R.R.C., Mahood R., Steward J., Bayliss M., MacLeod C. et al. Dual route vaccination for plague with emergency use applications. Vaccine 2018; 36(34): 5210–5217. DOI: 10.1016/j.vaccine.2018.06.039
  39. Sanapala S., Rahav H., Patel H., Sun W., Curtiss R. Multiple antigens of Yersinia pestis delivered by live recombinant attenuated Salmonella vaccine strains elicit protective immunity against plague. Vaccine 2016; 34(21): 2410–16. DOI: 10.1016/j.vaccine.2016.03.094
  40. Sun W., Roland K.L., Kuang X., Branger Ch.G. Yersinia pestis with Regulated Delayed Attenuation as a Vaccine Candidate To Induce Protective Immunity against Plague. Infect. Immun. 2010; 78(3): 1304–13. DOI: 10.1128/IAI.01122-09
  41. Demeure C.E., Derbise A., Carniel E. Oral vaccination against plague using Yersinia pseudotuberculosis. Chem. Biol. Interact. 2017; 267: 89–95. DOI: 10.1016/j.cbi.2016.03.030
  42. Arnaboldi P.M., Sambir M., D’Arco C., Peters L.A., Seegers J.F.M.L., Mayer L., McCormick A.A., Dattwyler R.J. Intranasal delivery of a protein subunit vaccine using a Tobacco Mosaic Virus platform protects against pneumonic plague. Vaccine 2016; 34(47): 5768–76. DOI: 10.1016/j.vaccine.2016.09.063
  43. Kilgore P.B., Sha J., Andersson J.A., Motin V.L., Chopra A.K. A new generation needle- and adjuvant-free trivalent plague vaccine utilizing adenovirus-5 nanoparticle platform. NPJ Vaccines 2021; 6(1): 21. DOI: 10.1038/s41541-020-00275-3
  44. Erova T.E., Rosenzweig J.A., Sha J., Suarez G., Sierra J.C., Kirtley M.L. et al. Evaluation of protective potential of Yersinia pestis outer membrane protein antigens as possible candidates for a new-generation recombinant plague vaccine. Clin. Vaccine Immunol. 2013; 20(2): 227–38. DOI: 10.1128/CVI.00597-12
  45. Красильникова Е.А., Трунякова А.С., Вагайская А.С., Светоч Т.Э., Шайхутдинова Р.З., Дентовская С.В. Подбор новых молекулярных мишеней для оптимизации вакцинопрофилактики и терапии чумы. Инфекция и иммунитет 2021; 11(2): 265–82. DOI: 10.15789/2220- 7619-SNM-1254
  46. 46 Корнева А.В., Николаев В.Б., Половинкина В.С., Марков Е.Ю., Козлов С.Н., Мазепа А.В. и др. Получение, характеристика и вакцинный потенциал поверхностных структур бактериальных возбудителей особо опасных инфекций. Дальневосточный журнал инфекционной патологии 2019; 37: 91–2.
  47. Byvalov A.A., Konyshev I.V., Uversky V.N., Dentovskaya S.V., Anisimov A.P. Yersinia outer membrane vesicles as potential vaccine candidates in protecting against plague. Biomolecules 2020; 10(12): 1694. DOI: 10.3390/biom10121694
  48. Сутягин В.В., Ковалева Г.Г. Белки вакцинного штамма чумного микроба (Yersinia pestis EV НИИЭГ) с потенциальными свойствами аллергенов. Проблемы особо опасных инфекций 2019; (4): 97–101. DOI: 10.21055/0370-1069-2019-4-97-101
  49. Dentovskaya S.V., Vagaiskaya A.S., Platonov M.E., Trunyakova A.S., Kotov S.A., Krasil’nikova E.A. и др. Peptidoglycan-Free Bacterial Ghosts Confer Enhanced Protection against Yersinia pestis Infection. Vaccines (Basel) 2021; 10(1): 51. DOI: 10.3390/vaccines10010051
  50. Wang S., Heilman D., Liu F., Giehl T., Joshi S., Huang X. et al. A DNA vaccine producing LcrV antigen in oligomers is effective in protecting mice from lethal mucosal challenge of plague. Vaccine 2004; 22: 3348–57. DOI: 10.1016/ j.vaccine.2004.02.036
  51. Verma S.K., Tuteja U. Plague Vaccine Development: Current Research and Future Trends. Front Immunol. 2016; 7: 602. DOI: 10.3389/fimmu.2016.00602
  52. Клюева С.Н., Шмелькова Т.П., Щуковская Т.Н. Влияние олигодезоксинуклеотида CpG ODN 2006 на продукцию цитокинов клетками крови людей, вакцинированных против чумы. Медицинская иммунология 2014; 16(6): 531–8. DOI: 10.15789/1563-0625-2014-6-531-538
  53. Wagner D.A., Kelly S.M., Petersen A.C., Peroutka-Bigus N., Darling R.J., Bellaire B.H. et al. Single-dose combination nanovaccine induces both rapid and long-lived protection against pneumonic plague. Acta Biomater. 2019; 100: 326–37. DOI: 10.1016/j.actbio.2019.10.016
  54. 54. Hamzabegovic F., Goll J.B., Hooper W.F., Frey S., GelberC.E., Abate G. Flagellin adjuvanted F1/V subunit plague vaccine induces T cell and functional antibody responses with unique gene signatures. NPJ Vaccines 2020; 5(1): 6. DOI: 10.1038/s41541-020-0156-y
  55. Heath M.D., Mohsen M.O., de Kam P.-J., Velazquez T.L.C., Hewings S.J., Kramer M.F. et al. Shaping Modern Vaccines: Adjuvant Systems Using MicroCrystalline Tyrosine (MCT®). Front Immunol. 2020; 11: 594911. DOI: 10.3389/fimmu.2020.594911
  56. Dinc G., Pennington J.M., Yolcu E.S., Lawrenz M.B., Shirwan H. Improving the Th1 cellular efficacy of the lead Yersinia pestis rF1-V subunit vaccine using SA-4-1BBL as a novel adjuvant. Vaccine 2014; 32(39): 5035–40.
  57. Дентовская С.В., Копылов П.Х., Иванов С.А., Агеев С.А., Анисимов А.П. Молекулярные основы вакцинопрофилактики чумы. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология 2013; (3): 3–12.
  58. Feodorova V.A., Corbel M.J. Prospects for new plague vaccines. Expert Rev. Vaccines 2009; 8(12): 1721–38. DOI: 10.1586/erv.09.129
  59. Sun W., Roland K.L., Curtiss R. Developing live vaccines against plague. J. Infect. Dev. Ctries 2011; 5(9): 614–27. DOI: 10.3855/jidc.2030
  60. Wang X., Zhang X., Zhou D., Yang R. Live-attenuated Yersinia pestis vaccines. Expert Rev. Vaccines 2013; 12(6): 677–86. DOI: 10.1586/erv.13.42
  61. Feodorova V.A., Sayapina L.V., Motin V.L. Assessment of live plague vaccine candidates. Methods Mol. Biol. 2016; 1403: 487–98. DOI: 10.1007/978-1-4939-3387-7_27
  62. Cote C.K., Biryukov S.S., Klimko C.P., Shoe J.L., Hunter M., Rosario-Acevedo R. et al. Protection elicited by attenuated live Yersinia pestis vaccine strains against lethal infection with virulent Y. pestis. Vaccines (Basel) 2021; 9(2): 161. DOI: 10.3390/vaccines9020161
  63. Sun W. Plague vaccines: status and future. Adv. Exp. Med. Biol. 2016; 918: 313–60. DOI: 10.1007/978-94-024-0890-4_12
  64. Huang S.S., Li I.H., Hong P.D., Yeh M.K. Development of Yersinia pestis F1 antigen-loaded microspheres vaccine against plague. Int. J. Nanomedicine 2014; (9): 813–22. DOI: 10.2147/IJN.S56260
  65. Киреев М.Н., Волох О.А., Никифоров А.К. Композиты на основе природных биополимеров: свойства и перспективы применения при создании трансдермальных форм вакцин. Разработка и регистрация лекарственных средств 2016; 1(14): 70-72.
  66. Alvarez M.L., Cardineau G.A. Prevention of bubonic and pneumonic plague using plant-derived vaccines. Biotechnol. Adv. 2010; 28(1): 184–96. DOI: 10.1016/j.biotechadv.2009.11.006
  67. Ryzhko I.V., Tsuraeva R.I., Moldavan I.A., Shcherbanyuk A.I., Shutko A.G. Evaluation of outcomes at specific prophylaxis with antibiotic resistant immunogenic strain of plague microbe and emergency prophylaxis with aminoglycosides in marine model of experimental plague. Antibiotics and Chemotherapy 2003; 48(5): 15–9.
  68. Ryzhko I.V., Tsuraeva R.I., Moldavan I.A., Shcherbanyuk A.I. Efficacy of plague prophylaxis with streptomycin, tetracyclines and rifampicin used simultaneously with immunization by resistant variant of ev niieg strain in studies on albino mice. Antibiotics and Chemotherapy 2004; 49(1): 17–21.
  69. Рыжко И.В., Молдаван И.А., Цураева Р.И., Щербанюк А.И. Профилактическое применение цефтриаксона в сочетании с иммунизацией антигеном F I у беспородных белых мышей, инфицированных возбудителем чумы; формирование противочумного иммунитета. Антибиотики и химиотерапия 2006; 51(9–10): 8–12.
  70. Zauberman A., Gur D., Levy Y., Aftalion M., Vagima Y., Tidhar A. et al. Postexposure administration of a Yersinia pestis live vaccine for potentiation of second-line antibiotic treatment against pneumonic plague. J. Infect. Dis. 2019; 220(7): 1147–51. DOI: 10.1093/infdis/jiz260
  71. Дармов И.В., Погорельский И.П., Ежов А.В., Мохов Д.А., Хонин А.З. Изучение иммунобиологических свойств вакцины чумной живой сухой на основе штамма ЕВ Р2 Y. pestis. В кн.: Научные труды, посвященные 75-летию НИИ микробиологии МО РФ. Киров; 2003. 77 c.
  72. Бугоркова С.А., Девдариани З.Л., Щуковская Т.Н., Кутырев В.В. Исторические и современные представления о проблеме специфической профилактики чумы. Проблемы особо опасных инфекций 2013; (3): 63–9. DOI: 10.21055/0370-1069-2013-3-63-69

Об авторах / Для корреспонденции

Щипелева Ирина Александровна – к.б.н., ведущий научный сотрудник, и. о. начальника научного отдела – ученый секретарь, Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; shipeleva.irina@yandex.ru; https://orcid.org/0000-0001-6263-8155
Кретенчук Оксана Федоровна – к.б.н., старший научный сотрудник научного отдела, Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; ; oksidjinf@mail.ru; https://orcid.org/0000-0001-5299-0243.
Коршенко Виктория Александровна – к.б.н., старший научный сотрудник научного отдела, Ростовский-на-Дону противочумный институт» Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия;; korshenko_va@antiplague.ru, https://orcid.org/0000-0001-7126-4327
Марковская Елена Ивановна – к.м.н., старший научный сотрудник научного отдела, Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора, Ростов-на-Дону, Россия; ; plague@aaanet.ru, https://orcid.org/0000-0002-5360-951X

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.